Potencial entomopatog�nico de microrganismos termotolerantes isolados de Dermestes maculatus infectados contra larvas de Culex pipiens

Palavras-chave: quitina, entomopatogênico, quitinolítico, larvicida, ecológico

Resumo

Durante o verão, quando as temperaturas atingem níveis extremos, os habitantes do Saara buscam refúgio nos oásis em busca de sombra e água. Esses ecossistemas são caracterizados por um microclima único. No entanto, enfrentam sérias ameaças de duas espécies de artrópodes: escorpiões venenosos e mosquitos, que atuam como vetores de doenças. Os produtos químicos utilizados afetam tanto os componentes bióticos quanto abióticos do ecossistema e, de forma mais crítica, a saúde humana. Microrganismos entomopatogênicos quitinolíticos foram isolados a partir de amostras de poeira coletadas de cadáveres de Dermestes maculatus. A quitina extraída de cascas de camarão (rendimento: 16,6 %) foi utilizada como única fonte de carbono no meio seletivo para seu cultivo. Cinco cepas foram obtidas: três fungos (Aspergillus flavus, A. fumigatus, Mucor sp.) e duas bactérias (Bacillus sp. e Actinomiceto). Os bioensaios realizados com larvas de terceiro instar de Culex pipiens mostraram que Actinomiceto (10⁶ CFU.mL-1) causou 90 % de mortalidade, seguido por A. fumigatus, Mucor sp. e Bacillus sp. (80 %). Os dados foram analisados por meio de ANOVA de uma via e teste de Duncan (p<0,05). As observações microscópicas revelaram deformidades larvais severas. Esses resultados confirmam o forte potencial larvicida dos microrganismos como alternativas ecológicas aos inseticidas químicos.

Downloads

Não há dados estatísticos.

Referências

Abbott, W. S. (1925). A method of computing the effectiveness of an insecticide. Journal of Economic Entomology, 18(2), 265-267. https://doi.org/10.1093/jee/18.2.265
Aguilar-Durán, J. A., Villarreal-Treviño, C., Fernández-Santos, N. A., Hamer, Gabriel L., & Rodríguez-Pérez, M. A. (2023). Virulence of entomopathogenic fungi isolated from wild mosquitoes against Aedes aegypti. Entomological Research, 53(2), 158-166. https://doi.org/10.1111/1748-5967.12640
Al-Nagar, N. M. A., Shawir, M. S., & Abdelgaleil, S. A. M. (2024). Mosquitocidal activity of extracts derived from soil Actinomycete isolates. Alexandria Science Exchange Journal, 45(4), 719-729. https://doi.org/10.21608/asejaiqjsae.2024.395086
Arreguín-Pérez, C. A., Miranda-Miranda, E., Folch-Mallol, J. L., & Cossío-Bayúgar, R. (2023). Identification of virulence factors in entomopathogenic Aspergillus isolates. Microorganisms, 1(8), 2107. Jhttps://www.ncbi.nlm.nih.gov/pmc/articles/PMC10457961/
Bharadwaj, N., Sharma, R., Subramanian, M., Ragini, G., Nagarajan, S. A., & Rahi, M. (2025). Omics approaches in understanding insecticide resistance in mosquito vectors. International Journal of Molecular Sciences, 26(5), 1854. https://doi.org/10.3390/ijms26051854
Goettel, M. S., Eilenberg, J., & Glare, T. R. (2010). Entomopathogenic fungi and their role in regulation of insect populations. In L. A. Lacey (Ed.), Manual of Techniques in Invertebrate Pathology (2nd ed., pp. 387-432). Academic Press. https://doi.org/10.1016/C2010-0-66784-8
Izadi, H., Asadi, H., & Bemani, M. (2025). Chitin: A comparison between its main sources. Frontiers in Materials, 12: 1537067. https://doi.org/10.3389/fmats.2025.1537067
Balumahendhiran, K., Vivekanandhan, P., & Shivakumar, M. S. (2019). Mosquito control potential of secondary metabolites isolated from Aspergillus flavus and Aspergillus fumigatus. Biocatalysis and Agricultural Biotechnology, 21, 101334. https://doi.org/10.1016/j.bcab.2019.101334
Lacey, L. A. (2017). Entomopathogens used as microbial control agents. In Microbial control of insect and mite pests (pp. 3-12). Academic Press. https://doi.org/10.1016/B978-0-12-803527-6.00001-9
Lamy, D. L., Gnambani, E. J., Sare, I., Millogo, S. A., Sodré, F. A., Namountougou, M., Viana, M., Baldini, F., Diabaté, A., & Bilgo, E. (2025). Metarhizium pingshaense increases susceptibility to insecticides in highly resistant malaria mosquitoes Anopheles coluzzii. Wellcome Open Research, 9, 290. https://doi.org/10.12688/wellcomeopenres.21238.2
Lavine, M. D., & Strand, M. R. (2002). Insect hemocytes and their role in immunity. Insect Biochemistry and Molecular Biology, 32(10), 1295-1309. https://doi.org/10.1016/S0965-1748(02)00092-9.
Li, X., & Wiens, J. J. (2023). Estimating global biodiversity: The role of cryptic insect species. Systematic Biology, 72(2), 391-403. https://doi.org/10.1093/sysbio/syac069
Natrah, F. M. I., Ruwandeepika, H. A. D., Pawar, S., Karunasagar, I., Sorgeloos, P., Bossier, P., & Defoirdt, T. (2011). Regulation of virulence factors by quorum sensing in Vibrio harveyi. Veterinary Microbiology, 154(1-2), 124-129. https://doi.org/10.1016/j.vetmic.2011.06.024
Parco, J., Valverde-Rodríguez, A., Cornejo, A., Briceño, H., Barrionuevo, L., & Romero, J. (2023). Efficiency of entomopathogenic bacteria and fungi on Oligonychus yothersi in vitro and on Persea americana Mill. plants. Revista de la Facultad de Agronomía (LUZ), 40(4), e234033.
https://produccioncientificaluz.org/index.php/agronomia/article/view/40991/47103
Hossain, M. S., Anjum, M. F., Rabbani, M. A., Hasan, M. R., Sohag, M. M. H., Tasnim, N., Karmakar, D., Akter, S., Rahman, M. M., & Karim, M. R. (2025). Bacillus altitudinis: a sustainable mosquito controlling biopesticide isolated from the rhizospheric soil of Nypa fruticans in mangrove forest. BMC Microbiology, 25, 733. https://doi.org/10.1186/s12866-025-04168-0
Seratnahaei, M., Eshraghi, S. S., Pakzad, P., Zahraei-Ramazani, A., & Yaseri, M. (2023). Larvicidal effects of metabolites extracted from Nocardia and Streptomyces species against the forth larval stage of Anopheles stephensi (Diptera: Culicidae). Journal of Arthropod-Borne Diseases, 17(2), 187-196. https://doi.org/10.18502/jad.v17i2.13623
Renuka, S., Vani, H. C., & Alex, E. (2023). Entomopathogenic fungi as a potential management tool for the control of urban malaria vector Anopheles stephensi (Diptera: Culicidae). Journal of Fungi, 9(2), 223. https://doi.org/10.3390/jof9020223
Singh, R., & Dubey, A. K. (2015). Endophytic Actinomycetes as emerging source for therapeutic compounds. Indo Global Journal of Pharmaceutical Sciences, 5(2), 106-116. https://doi.org/10.35652/igjps.2015.11
Valdez, D., Farah, S., Espinoza, W., Veliz, F., Villon, H., & Herrera, L. (2025). Biocontrol of Cosmopolites sordidus using entomopathogenic fungi under laboratory conditions, Ecuador. Revista de la Facultad de Agronomía (LUZ), 42(2), e254217. https://doi.org/10.47280/RevFacAgron(LUZ).v42.2
Vega, F. E., & Kaya, H. K. (Eds.). (2012). Insect pathology (2nd ed.). Academic Press. https://doi.org/10.1016/B978-0-12-384984-7.00001-4
Zogo, B., Tchiekoi, B. N., Koffi, A. A., Dahounto, A., Ahoua Alou, L. P., Dabiré, R. K., Baba-Moussa, L., Moiroux, N., & Pennetier, C. (2019). Impact of sunlight exposure on the residual efficacy of biolarvicides Bacillus thuringiensis israelensis and Bacillus sphaericus against the main malaria vector Anopheles gambiae. Malaria Journal, 18, 55. https://doi.org/10.1186/s12936-019-2687-0
Zhu, G., Ding, W., Zhao, H., Xue, M., Chu, P., & Jiang, L. (2023). Effects of the entomopathogenic fungus Mucor hiemalis BO-1 on the physical functions and transcriptional signatures of Bradysia odoriphaga larvae. Insects, 14(2), 162. https://doi.org/10.3390/insects14020162
Publicado
2025-12-28
Como Citar
Boulanouar, A., Hamani, Z., & Larbi, B. (2025). Potencial entomopatog�nico de microrganismos termotolerantes isolados de Dermestes maculatus infectados contra larvas de Culex pipiens. Revista Da Faculdade De Agronomia Da Universidade De Zulia, 43(1), e264305. Obtido de https://produccioncientificaluz.org/index.php/agronomia/article/view/45001
Secção
Produção Vegetal