Potencial entomopat�geno de microorganismos termotolerantes aislados de Dermestes maculatus infectados contra larvas de Culex pipiens
Resumen
Durante el verano, cuando las temperaturas alcanzan valores extremos, los habitantes del Sahara buscan refugio en los oasis para obtener sombra y agua. Estos ecosistemas se caracterizan por un microclima único. Sin embargo, enfrentan graves amenazas de dos especies de artrópodos: los escorpiones venenosos y los mosquitos, que actúan como vectores de enfermedades. Los productos químicos utilizados afectan tanto los componentes bióticos como abióticos del ecosistema y, de manera más crítica, la salud humana. Se aislaron microorganismos entomopatógenos quitinolíticos a partir de muestras de polvo recolectadas de los cadáveres de Dermestes maculatus. La quitina extraída de caparazones de camarón (rendimiento: 16,6 %) se utilizó como única fuente de carbono en el medio selectivo para su cultivo. Se obtuvieron cinco cepas: tres hongos (Aspergillus flavus, A. fumigatus, Mucor sp.) y dos bacterias (Bacillus sp. y Actinomiceto). Los bioensayos contra larvas de tercer estadio de Culex pipiens mostraron que Actinomiceto (10⁶ CFU.mL-1) provocó un 90 % de mortalidad, seguido por A. fumigatus, Mucor sp. y Bacillus sp. (80 %). Los datos se analizaron mediante ANOVA de una vía y la prueba de Duncan (p<0,05). Las observaciones microscópicas revelaron deformidades larvales severas. Estos resultados confirman el fuerte potencial larvicida de los microorganismos como alternativas ecológicas a los insecticidas químicos.
Descargas
Citas
Aguilar-Durán, J. A., Villarreal-Treviño, C., Fernández-Santos, N. A., Hamer, Gabriel L., & Rodríguez-Pérez, M. A. (2023). Virulence of entomopathogenic fungi isolated from wild mosquitoes against Aedes aegypti. Entomological Research, 53(2), 158-166. https://doi.org/10.1111/1748-5967.12640
Al-Nagar, N. M. A., Shawir, M. S., & Abdelgaleil, S. A. M. (2024). Mosquitocidal activity of extracts derived from soil Actinomycete isolates. Alexandria Science Exchange Journal, 45(4), 719-729. https://doi.org/10.21608/asejaiqjsae.2024.395086
Arreguín-Pérez, C. A., Miranda-Miranda, E., Folch-Mallol, J. L., & Cossío-Bayúgar, R. (2023). Identification of virulence factors in entomopathogenic Aspergillus isolates. Microorganisms, 1(8), 2107. Jhttps://www.ncbi.nlm.nih.gov/pmc/articles/PMC10457961/
Bharadwaj, N., Sharma, R., Subramanian, M., Ragini, G., Nagarajan, S. A., & Rahi, M. (2025). Omics approaches in understanding insecticide resistance in mosquito vectors. International Journal of Molecular Sciences, 26(5), 1854. https://doi.org/10.3390/ijms26051854
Goettel, M. S., Eilenberg, J., & Glare, T. R. (2010). Entomopathogenic fungi and their role in regulation of insect populations. In L. A. Lacey (Ed.), Manual of Techniques in Invertebrate Pathology (2nd ed., pp. 387-432). Academic Press. https://doi.org/10.1016/C2010-0-66784-8
Izadi, H., Asadi, H., & Bemani, M. (2025). Chitin: A comparison between its main sources. Frontiers in Materials, 12: 1537067. https://doi.org/10.3389/fmats.2025.1537067
Balumahendhiran, K., Vivekanandhan, P., & Shivakumar, M. S. (2019). Mosquito control potential of secondary metabolites isolated from Aspergillus flavus and Aspergillus fumigatus. Biocatalysis and Agricultural Biotechnology, 21, 101334. https://doi.org/10.1016/j.bcab.2019.101334
Lacey, L. A. (2017). Entomopathogens used as microbial control agents. In Microbial control of insect and mite pests (pp. 3-12). Academic Press. https://doi.org/10.1016/B978-0-12-803527-6.00001-9
Lamy, D. L., Gnambani, E. J., Sare, I., Millogo, S. A., Sodré, F. A., Namountougou, M., Viana, M., Baldini, F., Diabaté, A., & Bilgo, E. (2025). Metarhizium pingshaense increases susceptibility to insecticides in highly resistant malaria mosquitoes Anopheles coluzzii. Wellcome Open Research, 9, 290. https://doi.org/10.12688/wellcomeopenres.21238.2
Lavine, M. D., & Strand, M. R. (2002). Insect hemocytes and their role in immunity. Insect Biochemistry and Molecular Biology, 32(10), 1295-1309. https://doi.org/10.1016/S0965-1748(02)00092-9.
Li, X., & Wiens, J. J. (2023). Estimating global biodiversity: The role of cryptic insect species. Systematic Biology, 72(2), 391-403. https://doi.org/10.1093/sysbio/syac069
Natrah, F. M. I., Ruwandeepika, H. A. D., Pawar, S., Karunasagar, I., Sorgeloos, P., Bossier, P., & Defoirdt, T. (2011). Regulation of virulence factors by quorum sensing in Vibrio harveyi. Veterinary Microbiology, 154(1-2), 124-129. https://doi.org/10.1016/j.vetmic.2011.06.024
Parco, J., Valverde-Rodríguez, A., Cornejo, A., Briceño, H., Barrionuevo, L., & Romero, J. (2023). Efficiency of entomopathogenic bacteria and fungi on Oligonychus yothersi in vitro and on Persea americana Mill. plants. Revista de la Facultad de Agronomía (LUZ), 40(4), e234033.
https://produccioncientificaluz.org/index.php/agronomia/article/view/40991/47103
Hossain, M. S., Anjum, M. F., Rabbani, M. A., Hasan, M. R., Sohag, M. M. H., Tasnim, N., Karmakar, D., Akter, S., Rahman, M. M., & Karim, M. R. (2025). Bacillus altitudinis: a sustainable mosquito controlling biopesticide isolated from the rhizospheric soil of Nypa fruticans in mangrove forest. BMC Microbiology, 25, 733. https://doi.org/10.1186/s12866-025-04168-0
Seratnahaei, M., Eshraghi, S. S., Pakzad, P., Zahraei-Ramazani, A., & Yaseri, M. (2023). Larvicidal effects of metabolites extracted from Nocardia and Streptomyces species against the forth larval stage of Anopheles stephensi (Diptera: Culicidae). Journal of Arthropod-Borne Diseases, 17(2), 187-196. https://doi.org/10.18502/jad.v17i2.13623
Renuka, S., Vani, H. C., & Alex, E. (2023). Entomopathogenic fungi as a potential management tool for the control of urban malaria vector Anopheles stephensi (Diptera: Culicidae). Journal of Fungi, 9(2), 223. https://doi.org/10.3390/jof9020223
Singh, R., & Dubey, A. K. (2015). Endophytic Actinomycetes as emerging source for therapeutic compounds. Indo Global Journal of Pharmaceutical Sciences, 5(2), 106-116. https://doi.org/10.35652/igjps.2015.11
Valdez, D., Farah, S., Espinoza, W., Veliz, F., Villon, H., & Herrera, L. (2025). Biocontrol of Cosmopolites sordidus using entomopathogenic fungi under laboratory conditions, Ecuador. Revista de la Facultad de Agronomía (LUZ), 42(2), e254217. https://doi.org/10.47280/RevFacAgron(LUZ).v42.2
Vega, F. E., & Kaya, H. K. (Eds.). (2012). Insect pathology (2nd ed.). Academic Press. https://doi.org/10.1016/B978-0-12-384984-7.00001-4
Zogo, B., Tchiekoi, B. N., Koffi, A. A., Dahounto, A., Ahoua Alou, L. P., Dabiré, R. K., Baba-Moussa, L., Moiroux, N., & Pennetier, C. (2019). Impact of sunlight exposure on the residual efficacy of biolarvicides Bacillus thuringiensis israelensis and Bacillus sphaericus against the main malaria vector Anopheles gambiae. Malaria Journal, 18, 55. https://doi.org/10.1186/s12936-019-2687-0
Zhu, G., Ding, W., Zhao, H., Xue, M., Chu, P., & Jiang, L. (2023). Effects of the entomopathogenic fungus Mucor hiemalis BO-1 on the physical functions and transcriptional signatures of Bradysia odoriphaga larvae. Insects, 14(2), 162. https://doi.org/10.3390/insects14020162
Derechos de autor 2026 Ali Boulanouar, Zineb Hamani, Benlarbi Larbi

Esta obra está bajo licencia internacional Creative Commons Reconocimiento-NoComercial-CompartirIgual 4.0.














