Influencia del ácido piroleñoso sobre el cultivo de pepino en condiciones de organopónico

• Liliana Rondón-Estrada Maestría en Ciencias en Producción Agropecuaria Tropical. Universidad Autónoma de Chiapas, Chiapas (México). https://orcid.org/0009-0002-4826-4649
• Ernesto Gómez-Padilla Doctorado en Ciencias Agropecuarias y Sustentabilidad (DOCAS). Universidad Autónoma de Chiapas. Tuxtla Gutiérrez, Chiapas (México). https://orcid.org/0000-0002-3055-8203
• Francisco Guevara-Hernández Facultad de Ciencias Agronómicas Campus V, Villaflores- Universidad Autónoma de Chiapas (México). https://orcid.org/0000-0002-1444-6324
• Manuel La O-Arias Facultad de Ciencias Agronómicas Campus V, Villaflores- Universidad Autónoma de Chiapas (México). https://orcid.org/0000-0002-6491-2063
• Mariela Reyes-Sosa Facultad de Ciencias Agronómicas, Cátedras CONAHCYTUNACH, Villaflores, Chiapas-Universidad Autónoma de Chiapas (México). http://orcid.org/0000-0002-9977-4246
• Roberto Viltres-Rodríguez Maestría en Ciencias en Producción Agropecuaria Tropical. Universidad Autónoma de Chiapas, Chiapas (México). Facultad de Ciencias Agropecuarias, Universidad de Granma, Bayamo (Cuba). https://orcid.org/0000-0002-3634-5284

Palabras clave: Cucumis sativus L., vegetales, vinagre de madera, bioestimulante

Resumen

El ácido piroleñoso es reconocido como un bioestimulante efectivo en una gran variedad de cultivos, ya que mejora procesos como la germinación, el crecimiento y el rendimiento, además de inducir tolerancia al estrés y aumentar la resistencia de las plantas a condiciones adversas. Para evaluar el efecto de la aplicación de ácido piroleñoso (AP) aplicado foliarmente y al sustrato sobre el crecimiento, desarrollo y rendimiento del cultivo de pepino, se estableció un experimento en condiciones de organopónico en Bayamo, Granma, Cuba. Se utilizaron siete tratamientos consistentes en dosis de AP a razón de 5 mL.L^-1 foliar (FD1), 10 mL.L^-1 foliar (FD2), 15 mL.L^-1 foliar (FD3), 5 mL.L^-1 sustrato (SD1), 10 mL.L^-1 (SD2), 15 mL.L^-1 (SD3) y un control absoluto. Los tratamientos se establecieron sobre un diseño completamente aleatorizado. Cada tratamiento se repitió tres veces, con un tamaño de muestra de 15 plantas por repetición. El producto se aplicó a los 7, 14 y 21 días después de la germinación. A los 21 días después de la germinación, se evaluó la longitud del tallo (cm), diámetro de la base del tallo (cm), número de hojas, diámetro y longitud de las hojas (cm), cantidad de ramas formadas por planta y rendimiento del cultivo (t.ha^-1). La aplicación de AP, tanto de forma foliar como al sustrato, promovió el crecimiento y desarrollo del cultivo con dosis de 5 y 10 mL.L^-1. Asimismo, las variables relacionadas con el rendimiento también mostraron mejoras con la aplicación del producto, destacando que la mayor estimulación se observó al aplicar la dosis de 5 mL.L^-1 de manera foliar.

Citas

Aschan, G., & Pfanz, H. (2003). Non-foliar photosynthesis - A strategy of additional carbon acquisition. Flora-Morphology, Distribution, Functional Ecology of Plants, 198(2), 81–87. https://doi.org/10.1078/0367-2530-00080
Bell, J. C., Bound, S. A., & Buntain, M. (2022). Biostimulants in Agricultural and Horticultural Production. In Warrington Ian (Ed.), Horticultural Reviews (Vol. 49, pp. 35–95). John Wiley & Sons, Inc. https://doi.org/10.1002/9781119851981.ch2
Catacora, P. M. H., Quispe, A. I. V., Julian, L. E., Zanabria, M. R. M., Roque, C. M. J., & Zevallos, P. P. (2019). Caracterización de los componentes químicos del ácido piroleñoso obtenido de 3 especies forestales, con fines agrícolas en San Gabán, Puno (Perú). Ceprosimad, 7(2), 6–16. https://hdl.handle.net/20.500.12955/2233
Chen, L., Cao, H., Huang, Q., Xiao, J., & Teng, H. (2022). Absorption, metabolism and bioavailability of flavonoids: a review. Critical Reviews in Food Science and Nutrition, 62(28), 7730–7742. https://doi.org/10.1080/10408398.2021.1917508
Eichert, T., & Fernández, V. (2023). Uptake and release of elements by leaves and other aerial plant parts. In Rengel Zed, Cakmak Ismail, & White Philip J. (Eds.), Marschner’s Mineral Nutrition of Plants (Fourth Edition, pp. 105–129). Academic Press. https://doi.org/10.1016/B978-0-12-819773-8.00014-9
El Boukhari, M. E. M., Barakate, M., Bouhia, Y., & Lyamlouli, K. (2020). Trends in seaweed extract based biostimulants: Manufacturing process and beneficial effect on soil-plant systems. Plants, 9(3), 3–23. https://doi.org/10.3390/plants9030359
FAOSTAT. (2022). Cultivos y productos de ganadería. Pepinos y pepinillos: área, rendimiento y producción. https://www.fao.org/faostat/es/#data/QCL
Galbán, M. J. M., Martínez, B. D., & González, V. D. (2021). Efecto de extractos de sustancias húmicas en la germinación y el crecimiento de plántulas de arroz (Oryza sativa L.), cv. INCA LP-5. Cultivos Tropicales, 42(1), 1–12. https://n9.cl/j0gur
Halpern, M., Bar-Tal, A., Ofek, M., Minz, D., Muller, T., & Yermiyahu, U. (2015). Chapter Two - The Use of Biostimulants for Enhancing Nutrient Uptake. In Sparks Donald L. (Ed.), Advances in Agronomy (Vol. 130, pp. 141–174). Academic Press. https://doi.org/10.1016/bs.agron.2014.10.001
Jia, H., & Wang, H. (2021). Introductory Chapter: Studies on Cucumber. In Wang Haiping (Ed.), Cucumber Economic Values and Its Cultivation and Breeding (pp. 1–15). IntechOpen. https://doi.org/10.5772/intechopen.87508
Kathpalia, R., & Bhatla, S. C. (2018). Plant Mineral Nutrition. In Plant Physiology, Development and Metabolism (pp. 37–81). Springer. https://doi.org/10.1007/978-981-13-2023-1_2
Kemp, C. D. (1960). Methods of Estimating the Leaf Area of Grasses from Linear Measurements. Annals of Botany, 24(4), 491–499. https://doi.org/10.1093/oxfordjournals.aob.a083723
Korkalo, P., Hagner, M., Jänis, J., Mäkinen, M., Kaseva, J., Lassi, U., Rasa, K., & Jyske, T. (2022). Pyroligneous Acids of Differently Pretreated Hybrid Aspen Biomass: Herbicide and Fungicide Performance. Frontiers in Chemistry, 9, 1–14. https://doi.org/10.3389/fchem.2021.821806
Lescay, B. E., Verdecia, V. A., & Matos, Y. R. (2023). El Ácido Piroleñoso de marabú, una alternativa agroecológica para el combate de arvenses. Avances, 25(1), 35–44. http://avances.pinar.cu/index.php/publicaciones/article/
Liu, X., Chen, J., & Zhang, X. (2021). Genetic regulation of shoot architecture in cucumber. Horticulture Research, 8(1), 143. https://doi.org/10.1038/s41438-021-00577-0
Luo, H., Zhang, H., & Wang, H. (2023). Advance in sex differentiation in cucumber. Frontiers in Plant Science, 14:1186904, 1–11. https://doi.org/https://doi.org/10.3389/fpls.2023.1186904
Mellidou, I., & Karamanoli, K. (2022). Unlocking PGPR-Mediated Abiotic Stress Tolerance: What Lies Beneath. Frontiers in Sustainable Food Systems, 6, 1–8. https://doi.org/10.3389/fsufs.2022.832896
Mendivil, C., Nava, E., Armenta, A., Ayala, R., & Félix, J. (2020). Elaboración de un abono orgánico tipo bocashi y su evaluación en la germinación y crecimiento del rábano. Biotecnia, 22(1), 17–23. https://doi.org/https://doi.org/10.18633/biotecnia.v22i1.1120
Oficina Nacional de Estadística e Información de la República de Cuba (ONEI). (2023). Anuario estadístico de cuba 2022. Agricultura, Ganadería, Silvicultura y Pesca. 2023. https://www.onei.gob.cu/anuario-estadistico-de-cuba-2022
Orberá, R. T. M., Bayard, V. I., & Cuypers, A. (2021). Biostimulation of Vigna unguiculata subsp. sesquipedalis—Cultivar Sesquipedalis (Yardlong Bean)—by Brevibacillus sp. B65 in Organoponic Conditions. Current Microbiology, 78, 1882–1891. https://doi.org/10.1007/s00284-021-02453-5
Parađiković, N., Teklić, T., Zeljković, S., Lisjak, M., & Špoljarević, M. (2019). Biostimulants research in some horticultural plant species—A review. Food and Energy Security, 8(2), 1–17. https://doi.org/10.1002/fes3.162
Pratyusha, S. (2022). Phenolic Compounds in the Plant Development and Defense: An Overview. In M. Hasanuzzaman & K. Nahar (Eds.), Plant Stress Physiology - Perspectives in Agriculture (1st ed., pp. 125–139). https://doi.org/10.5772/intechopen.102873
Rodrigues, B. S., & Abbade, L. C. (2024). Herbicidal Effects of Pyroligneous Acid for Control in Weed Seed Bank. Journal of Advances in Biology & Biotechnology, 27(7), 1464–1469. https://doi.org/10.9734/jabb/2024/v27i71108
Rodríguez, N. A., Companioni, C. N., Peña, T. E., Carrió. R. M. V., González, B. R., Fresneda, B. J., Estrada. O. J., Cañet, P. F., Rey, G. R., Fernández, G. E., Vázquez, M. L. L., Avilés. P. R., Arozarena, D. N., Dibut, A. B., Pozo, M. J. L., Cun, G. R., & Martínez, R. F. (2020). Manual técnico para organopónicos, huertos intensivos y organoponía semiprotegida. (8va ed.). Ministerio de la Agricultura. La Habana, Cuba. https://n9.cl/4o1j3
Schrader, J., Shi, P., Royer, D. L., Peppe, D. J., Gallagher, R. V, Li, Y., Wang, R., & Wright, I. J. (2021). Leaf size estimation based on leaf length, width and shape. Annals of Botany, 128(4), 395–406. https://doi.org/10.1093/aob/mcab078
Singh, S., Chakraborty, J. P., & Mondal, M. K. (2020). Pyrolysis of torrefied biomass: Optimization of process parameters using response surface methodology, characterization, and comparison of properties of pyrolysis oil from raw biomass. Journal of Cleaner Production, 272. https://doi.org/https://doi.org/10.1016/j.jclepro.2020.122517
StatSoft, I. N. C. (2014). Statistica (Data Analysis Software System), Version 10 (Tulsa, Oklahoma, USA, StatSoft Inc.).
Sun, W., Ma, N., Huang, H., Wei, J., Ma, S., Liu, H., Zhang, S., Zhang, Z., Sui, X., & Li, X. (2021). Photosynthetic contribution and characteristics of cucumber stems and petioles. BMC Plant Biology, 21(454), 1–14. https://doi.org/10.1186/s12870-021-03233-w
Viltres, R. R. A., & Alarcón, Z. A. (2022). Caracterización química del bio-aceite de pirólisis rápida de biomasa. Revista Cubana de Química, 34(1), 131–158. https://shre.ink/8eSG