Control biológico de Ralstonia solanacearum y su efecto en el crecimiento vegetativo de banano orgánico

• Mario Ramos-Veintimilla Programa de Maestría en Sanidad Vegetal, Facultad de Posgrado, Universidad Técnica de Manabí, Portoviejo, Manabí, Ecuador. Estación Experimental Santo Domingo, Instituto Nacional de Investigaciones Agropecuarias (INIAP), La Concordia, Ecuador. https://orcid.org/0000-0003-2264-2808
• Freddy Zambrano-Gavilanes Departamento de Agronomía, Facultad de Ingeniería Agronómica, Universidad Técnica de Manabí, Portoviejo, Ecuador. https://orcid.org/0000-0003-0004-9122
• Karina Solís-Hidalgo Estación Experimental Tropical Pichilingue, Instituto Nacional de Investigaciones Agropecuarias (INIAP), Mocache, Ecuador. https://orcid.org/0000-0002-2696-4540
• Felipe Garcés-Fiallos Laboratorio de Fitopatología, Departamento de Agronomía, Facultad de Ingeniería Agronómica, Universidad Técnica de Manabí, Portoviejo, Ecuador. https://orcid.org/0000-0002-1795-4439
• Víctor Quimi Arce Empresa privada, Ecuador. Biológicos Alvarado & Maggio, Machala, El Oro, Ecuador. https://orcid.org/0009-0005-1227-322X
• Adriana Sánchez-Urdaneta Departamento de Agronomía, Facultad de Ingeniería Agronómica, Universidad Técnica de Manabí, Portoviejo, Ecuador. Carrera de Bioquímica y Farmacia, Facultad de Ciencias de la Salud, Universidad Técnica de Manabí, Portoviejo, Ecuador. Instituto de Investigación, Universidad Técnica de Manabí, Portoviejo, Ecuador. Departamento de Botánica, Facultad de Agronomía, Universidad del Zulia, Maracaibo, Venezuela. https://orcid.org/0000-0003-3108-0296

Palabras clave: Musa AAA, Trichoderma, Bacillus, ADMF®, Ralstonia solanacearum, AUDPC

Resumen

El banano (Musa AAA) es uno de los principales cultivos de importancia económica a nivel mundial. Actualmente, enfrenta un grave problema de muerte de plantas causada por la bacteria Ralstonia solanacearum (Smith) raza 2. El objetivo de la presente investigación fue evaluar el efecto del control biológico de Moko y su efecto relación en el crecimiento vegetativo de plántulas de banano en condiciones de campo. Se emplearon cuatro tratamientos: testigo absoluto (T0), Trichoderma spp. (T2), Bacillus spp. (Bio-remedy) (T3) y ADMF® (T4) con tres repeticiones, en un diseño de bloques completamente al azar. Se evalúo el periodo de incubación, el porcentaje de incidencia y el área bajo la curva del progreso de la enfermedad (ABCPE), la sobrevivencia y altura de plantas, el diámetro del pseudotallo y la tasa de emisión foliar. A los 113 días después del trasplante (dtt), los tratamientos T1, T2 y T3 mostraron mayor sobrevivencia de plántulas. La altura de plantas (111-145 cm), el diámetro del pseudotallo (7,43-11,28 cm) y la tasa de emisión foliar (11,74-13,15 hojas) presentaron diferencias significativas entre tratamientos. Las plantas tratadas presentaron la menor ABCPE (entre 576,1 y 1.435,4 unidades) en comparación con las no tratadas (3.156,55 unidades).Trichoderma, Bacillus y ADMF^® demostraron reducir la incidencia de la enfermedad y promover el crecimiento vegetativo de banano, constituyéndose en alternativas sostenibles viables para este cultivo.

Citas

Agamez Ramos, E. Y., Zapata Navarro, R. I., Oviedo Zumaqué, L. E., & Barrera Violeth, J. L. (2008). Evaluation of substrates and fermentation solid process for spores production of Trichoderma sp. Revista Colombiana de Biotecnología, 10(2), 23-34. https://www.redalyc.org/articulo.oa?id=77610204
Avozani, A., Tumelero, A. I., Baldiga Tonin , R., Denardin, N., Gomes Silva, A., & Garcés-Fiallos, F. R. (2022). Biological control of Corynespora cassicola and Drechslera tritici-repentis. Revista de Agricultura Neotropical, 9(4), e7111. https://doi.org/10.32404/rean.v9i4.7111
Bautista-Montealegre, L. G., Bolaños-Benavides, M. M., Abaunza-González, C. A., Arguelles-Cárdenas, J. H., & Forero-Camacho, C. A. (2016). Moko de plátano y su relación con propiedades físicas y químicas en suelos del departamento de Quindío Colombia. Revista Colombiana de Ciencias Hortícolas, 10(2), 273-283. https://doi.org/10.17584/rcch.2016v10i2.5066
Brunda, N. B., Chirag, D., Jilen, M., & Menaka, M. (2023). Effect of blending proportion on sensory appeal of the blended squash using banana pseudostem sap with mango, papaya and Aloe vera. IJCS, 11(1), 06-11. https://www.chemijournal.com/archives/2023/vol11issue1/PartA/10-6-32-941.pdf
Castaño-Zapata, J. (1989). Estandarización de la estimación de daños causados por hongos, bacterias y nematodos en fríjol (Phaseolus vulgaris L.). Fitopatología Colombiana, 13(1), 9-19.
Castillo, T. (2023). Effect of shade on the severity of Moko (Ralstonia solanacearum) on Guineo (Musa balbisiana ABB). European Journal of Agriculture and Food Sciences, 5(1), 1-5. https://doi.org/10.24018/ejfood.2023.5.1.611
Ceballos, G., Álvarez, E., & Bolaños, M. M. (2014). Reduction in populations of Ralstonia solanacearum race 2 in plantain (Musa AAB Simmonds) with extracts from Trichoderma spp. and antagonistic bacteria. Acta Agronomica, 63(1), 83-90. https://doi.org/10.15446/acag.v63n1.43121
Chávez-Arteaga, K.T., Cedeño-Moreira, Á.V., Canchignia-Martínez, H.F., & Garcés Fiallos, F.R. (2022). Candidate rhizobacteria as plant growth-promoters and root-knot nematode controllers in tomato plants. Scientia Agropecuaria, 13(4), 423-432. https://doi.org/10.17268/sci.agropecu.2022.038
Creencia Armi, R., Alcantara, E. P., Opulencia, R. B., Diaz, M. G. Q., & Monsalud, R. G. (2022). A preliminary screening of philippine mangrove soil bacteria exhibit suppression of Ralstonia solanacearum (Smith) Yabuuchi et al. causing moko disease of banana (Musa acuminata Cavendish subgroup) under laboratory conditions. Journal of the International Society for Southeast Asian Agricultural Sciences, 28(1), 135-148. http://issaasphil.org/wp-content/uploads/2022/06/11.-Creencia-et-al-2022-Mangrove-soil-bacteria-FINAL.pdf
Crespo-Clas, Á.M., Canchignia-Martínez, H.F., & Garcés-Fiallos, F.R. (2023). Nematodes and root system are affected by rhizobacterial consortium in the third generation of commercial banana plants. Revista de Agricultura Neotropical, 10(3), e7725. https://doi.org/10.32404/rean.v10i3.7725
Debnath, S., Khan, A. A., Das, A., Murmu, I., Khan, A., & Mandal, K. K. (2019). Genetic Diversity in Banana. 217-241. https://doi.org/10.1007/978-3-319-96454-6_8
Fernandes Domingues Duarte, C., Cecato, U., Trento Biserra, T., Mamédio, D., & Galbeiro, S. (2020). Azospirillum spp. en gramíneas y forrajeras. Revisión. Rev. Mex. Cienc. Pecu., 11(1), 223-240. https://doi.org/10.22319/rmcp.v11i1.4951
He, L. Y., Sequeira, L., & Kelman, A. (1983). Characteristics of strains of Pseudomonas solanacearum from China. Plant Disease, 67, 1357-1361. https://www.apsnet.org/publications/plantdisease/backissues/Documents/1983Articles/PlantDisease67n12_1357.PDF
Leite Pais, A. K., Silva dos Santos, L. V., Rodrigues Albuquerque, G. M., Gomes de Farias, A. R., Silva Junior, W. J., de Queiroz Balbino, V., Freire Silva, A. M., Siqueira da Gama, M. A., & Barbosa de Souza, E. (2022). Comparative genomics and phylogenomics of the Ralstonia solanacearum Moko ecotype and its symptomatological variants. Genetics and Molecular Biology, 45, 4, e20220038. https://doi.org/10.1590/1678-4685-GMB-2022-0038
Li, X., Li, K., Zhou, D., Zhang, M., Qi, D., Jing, T., Zang, X., Qi, C., Wang, W., Xie, J. (2021). Biological control of banana wilt disease caused by Fusarium oxyspoum f. sp. cubense using Streptomyces sp. H4. Biological Control, 155, 104524. https://doi.org/10.1016/j.biocontrol.2020.104524
Quispe-Quispe, E., Moreira-Morrillo, A.A., & Garcés-Fiallos, F.R. (2022). Una revisión sobre biocontroladores de Phytophthora capsici y su impacto en plantas de Capsicum: Una perspectiva desde el exterior al interior de la planta. Scientia Agropecuaria, 13(3), 275-289. https://doi.org/10.17268/sci.agropecu.2022.025
Ramírez, M., Neuman, B. W., & Ramírez, C. A. (2020). Bacteriophages as promising agents for the biological control of Moko disease (Ralstonia solanacearum) of banana. Biological Control, 149, 104238. https://doi.org/10.1016/j.biocontrol.2020.104238
Sabando-Ávila, F., Molina-Atiencia, L.M., & Garcés-Fiallos, F.R. (2017). Trichoderma harzianum en pre-trasplante aumenta el potencial agronómico del cultivo de piña. Revista Brasileira De Ciências Agrárias, 12(4), 410-414. https://doi.org/10.5039/agraria.v12i4a5468
Santos, H. G., Jacomine, P. K. T., Anjos, L. H. C., Oliveira, V. A., Oliveira, J. B., Coelho, M. R., Lumbreras, J. F., & Cunha, T. J. F. (2013). Sistema brasileiro de classificação de solos. 3. ed. Rev. Ampl. Rio de Janeiro: Embrapa Solos.
Shaner, G., and Finney R. E. (1977). The effect of nitrogen fertilization on the expression of slow-mildewing resistance in Knox wheat. Phytopathology, 67, 1051-1056. https://doi.org/10.1094/Phyto-67-1051
Soil SurveyStaff. (2014). Keys to soil taxonomy. Washington: Natural Resources Conservation Service and Agriculture Department.
Valencia, L., Álvarez, E., & Castaño, J. (2014). Resistencia de treinta y cuatro genotipos de platano (Musa AAB) y banano (Musa AAA) a cinco cepas de Ralstonia solanacearum Raza 2 (Smith). Agronomía, 22(2), 21-34. http://agronomia.ucaldas.edu.co/downloads/Agronomia 22(2)_3.pdf
Vargas-Calvo, A., Acuña-Chinchilla, P., & Valle-Ruiz, H. (2015). La emisión foliar en plátano y su relación con la diferenciación floral. Agronomía Mesoamericana, 26(1), 120-128. https://doi.org/10.15517/am.v26i1.16935
Villegas-Escobar, V., González-Jaramillo, L.M., Ramírez, M., Moncada, R.N., Sierra-Zapata, L., Orduz, S., & Romero-Tabarez, M. (2018). Lipopeptides from Bacillus sp. EA-CB0959: Active metabolites responsible for in vitro and in vivo control of Ralstonia solanacearum. Biological Control, 125, 20-28. https://doi.org/10.1016/j.biocontrol.2018.06.005
Zhou, Y., Yang, L., Wang, J., Guo, L., & Huang, J. (2021). Synergistic effect between Trichoderma virens and Bacillus velezensis on the control of tomato bacterial wilt disease. Horticulturae, 7(11), 439. https://doi.org/10.3390/horticulturae7110439