Infecções quiescentes por Colletotrichum gloeosporioides nos diferentes estágios de desenvolvimento da goiaba (Psidium guajava L.) em duas épocas de produção

• Clemencia Guédez Laboratorio de Fitopatología y Control Biológico “Carlos Díaz Polanco”, Universidad de Los Andes, Núcleo Rafael Rangel, Trujillo, Venezuela. Código postal: 3150 https://orcid.org/0000-0003-2760-1378
• Dorian Rodríguez Postgrado de Fitopatología, Agronomía, Universidad Centroccidental “Lisandro Alvarado”. Cabudare, Lara, Venezuela. Código postal: 3023 https://orcid.org/0000-0002-0538-7094

Palavras-chave: antracnose, infecções latentes, latentes botões, florais frutos imaturos

Resumo

O fungo Colletotrichum gloeosporioides é o causador da antracnose, uma das mais importantes doenças pós-colheita da goiaba. Para detectar infecções quiescentes por esse patógeno em botões de flores (YF) e goiaba em duas safras, foram selecionadas treze plantas e cinquenta YF por planta, dispostas em blocos ao acaso com três tratamentos: YF coberto inoculado, YF coberto não inoculado e descoberto YF descoberto (controle). Dez YF foram inoculados semanalmente com 3 mL de suspensão de conídios de C. gloeosporioides por YF, identificados com fitas coloridas. Semana^-1.data-¹. Após uma semana de inoculação, cinco YF foram coletados para seu tratamento, transferidos para o laboratório de onde foram lavados, desinfetados, incubados em câmara úmida e semeados no meio do PDA, para detecção da presença do fungo, os cinco restantes foram plantados YF na planta de colheita. As infecções inativas manifestaram-se em todas as fases de desenvolvimento dos frutos, com maior incidência entre 6 e 13 semanas, com diferenças significativas (p <0,001) entre infecções^-1.semanas^-1. O fungo se desenvolveu com maior incidência em câmara úmida (69,79 %) com aparecimento de massa mucilaginosa alaranjada e em PDA (51 %) com presença de crescimento micelial. O período de produção foi decisivo na detecção das infecções inativas, com maior percentual entre abril e agosto (69,10%) quando ocorreram. Estes resultados mostram que C. gloeosporioides infecta flores e frutos imaturos de goiaba e a doença se manifesta em frutos maduros.

Referências

Adikaram, N., Ch. Karunayake, G. Sinniah, I. Komala-Vithanage and D. Yakandawala. 2015. Fungal quiescence in fruit: an attempt to avoid toxic substances?. J. Mycopathol. Res. 53(1): 1-7.
Agrios, G. 2005. Plant Pathology. 5th Edition, Elsevier Academic Press, Amsterdam, 952 p.
Alkan, N., G. Friedlander, D. Ment, D. Prusky and R. Fluhr. 2015. Simultaneous transcriptome analysis of Colletotrichum gloeosporioides and tomato fruits response reveals novel fungal-fruit arm and defense strategies. New Phytologist. 205(2): 801-815.
Aular, J. y M. Casares. 2011. Consideraciones sobre la producción de frutas en Venezuela. Rev. Bras. Frutic. Jaboticabal. 33: 187-198.
Barkai, R. 2001. Postharvest Diseases of Fruits and Vegetables. Edit. Elsevier Science BV. 394 p.
Barnett, H. and B. Hunter. 1986. Ilustred genera of imperfect fungi. Burgess Publishing Company. Minnesota, USA. 241 p.
Bruce Da Silva, C. and S. Michereff. 2013. Biology of Colletotrichum spp. and epidemiology of the anthracnose in tropical fruit trees. Rev. Catinga. 26(4): 130-138.
Cannon, P., U. Damm, P. Johnston and B. Weir. 2012. Colletotrichum – Current status and future directions. Stud. Mycol. 73: 81–213.
Fischer, I., A. Soares, M. Arruda and L. Amorim. 2017. Temporal progress and spatial patterns of quiescent diseases in guava influenced by sanitation practices. Scienta Agric. 74(1): 68-76.
González, G., M. Ansorena, G. Viacava, S. Roura and J. Ayala-Zavala. 2013. Plant essential oils as antifungal treatments on the postharvest of fruit and vegetables. p. 429-446. In: Mehdi Razzaghiand Mahendra Rai( Eds). Antifungal metabolites from plants. Academic Edition. Springer-Verlag Berlin Heidelberg.
Huerta, G., F. Holguín, J. Benítez y J. Toledo. 2009. Epidemiología de la antracnosis Colletotrichum gloeosporioides (Penz.) Penz. and Sacc.] en mango (Mangifera indica L.) cv. Ataulfo en el Soconusco, Chiapas, México. Rev. Mex. Fitopatol. 27(2): 93-105.
Hyde, K., L. Cai, P. Cannon, J. Crouch, P. Crous, U. Damm, P. Johnston, Z. Liu, E. McKenzie, H. Prihastuti, R. Shivas, P. Taylor, B. Weir, Y. Yang and K. Zhang. 2009. Colletotrichum-names in current use. Fungal Diversity. 39: 147-183.
IBM Corporación Released. 2010. IBM SPSS Statistics for Windows, Version 19.0. Armonk, IBM Corp., NY.
Junqueira, N., R. Da Costa, A. Carneiro, V. Vargas, J. Peixoto e L. Junqueira. 2004. Efeito do óleo de soja no controle da antracnose e na conservação da manga cv. Palmer em pós-colheita. Rev. Bras. Frutic. Jaboticabal. 26(2): 222-225.
Laguado, N., M. Marín, L. Arenas, F. Araujo, C. Castro y A. Rincón. 2002. Crecimiento del fruto de guayaba (Psidium guajava L.) del tipo Criolla Roja. Rev. Fac. Agron. (LUZ).19: 273-283.
López, J., J. Castaño, M. Marulanda y A. López. 2013. Caracterización de la resistencia a la antracnosis causada por Glomerella cingulata y productividad de cinco genotipos de mora (Rubus glaucus Benth.) Acta Agron. 62(2): 174-185.
Michailides, T., D. Morgan and Y. Luo. 2010. Epidemiological assessments and postharvest disease incidence (Chapter 6). 2: 69-88. In: D. Prusky and M.L. Gullino (Eds). Postharvest Pathology in the 21st Century.
Moraes, S., T. Osama, A. Francisco, N. Sidnei and N. Massola. 2013. Histopathology of Colletotrichum gloeosporioides on guava fruits (Psidium guajava L.). Rev. Bras. Frutic. 35(2): 657-664.
Moraes, S., M. Escanferla and N. Massola. 2015. Prepenetration and penetration of Colletotrichum gloeosporioides into guava fruit (Psidium guajava L.): effects of temperature, wetness period and fruit age. J. Phytopathol.163: 149-159.
Piccinin, E., S. Pascholati e R. Di Piero. 2005. Guava diseases: Doenças da goiabeira (Psidium guajava L.). p. 401-405. In: Kimati, H.; Amorim, L.; Rezende, J.A.M.; Bergamin Filho, A.; Camargo, L.E.A., eds. Manual de fitopatologia: doenças das plantas cultivadas. 4ed. Ceres, São Paulo, SP, Brazil.
Phoulivong, S., L. Cai, H. Chen, E. McKenzie, K. Abdelsalam, E. Chukeatirote and K. Hyde. 2010. Colletotrichum gloeosporioides is not a common pathogen on tropical fruits. Fungal Diversity. 44: 33–43.
Prusky, D., l. Kobiler, M. Akerman and I. Miyara. 2006. Effect of acidic solutions and acidic prochloraz on the control of postharvest decay caused by Alternaria alternata in mango and persimmon fruits. Postharvest Biol. Technol. 42: 134–41.
Prusky, D. and A. Lichter. 2007. Activation of quiescent infections by postharvest pathogens during transition from the biotrophic to the necrotrophic stage. Microbiol. Lett. 268: 1-8.
Prusky, D., N. Alkan, T. Mengiste and R. Fluhr. 2013. Quiescent and necrotrophic lifestyle choice during postharvest disease development. Annu. Rev. Phytopathol. 51: 155-176.
Romero, J., C. Agusti, A. Trapero and A. Santa Barbara. 2017. Detection of latent infections caused by Colletotrichum sp. in olive fruit. J. Appl. Microbiol. 124(1): 1-15.
Sánchez, A., E. Suárez, M. González, Y. Amaya, C. Colmenares y J. Ortega. 2009. Efecto del ácido indolbutírico sobre el enraizamiento de acodos aéreos de guayabo (Psidium guajava L.) en el municipio Baralt, Venezuela. Evaluación preliminar. Revista UDO Agrícola. 9 (1): 113-120.
Sharma, G., M. Maymon and S. Freeman. 2017. Epidemiology, pathology and identification of Colletotrichum including a novel species associated with avocado (Persea americana) anthracnose in Israel. Sci. Rep. 7: 1-16.
Silva, C. y S. Michereff. 2013. Biology of Colletotrichum spp. and epidemiology of the anthracnose in tropical fruit trees. Rev. Caatinga. 26: 130-138.
Soares, A., S. Lourenco and L. Amorim. 2008. Infection of guava by Colletotrichum gloeosporioides and Colletotrichum acutatum under different temperatures and wetting periods. Trop. Plant. Pathol. 33(4): 265-272.
Ventura, J. y R. Hinz. 2002. Controle das doenças da bananeira. p. 839-938. In: Zambolim L, Vale FXR, Monteiro AJA, Costa H (Eds.) Controle de doenças de plantas. Fruteiras. Vol. 2. Viçosa MG.