Efecto del estrés anisosmótico sobre la integridad estructural y funcional de la membrana plasmática y acrosomal de espermatozoides ovinos
Palabras clave:
estrés osmótico, semen, calidad espermática, ovinos
Resumen
La integridad de la membrana plasmática (MP) y del acrosoma (MA) han sido dos de los parámetros de valoración seminal más estudiados por su rol preponderante como límite celular y por ser responsable de hacer efectivas las interacciones entre células. Con miras a valorar más objetivamente los efectos del estrés osmótico sobre la integridad de la MP y MA, así como la relación de cambio ocurrido durante la criopreservación seminal, se evaluaron cinco eyaculados recién colectados, refrigerados a 5 ºC y descongeladas por morueco/sesión durante 5 semanas consecutivas. Mediante la tinción eosina-nigrosina (EN) se evaluó la vitalidad (VIT), las morfo anomalías y la respuesta celular luego de realizar las pruebas de resistencia osmótica (ORT), y de endósmosis (HOST). El efecto directo de la anisosmosis y la criopreservación sobre las variables dependientes fueron analizados mediante el procedimiento GLM (SAS®) y cuando se observaron diferencias, se cuantificaron los efectos mediante el LSMEANS. Todos los valores de calidad espermática estudiados fueron afectados significativamente (P<0,001) por la criopreservación (VIT, ORT, HOST). El ORT demostró como el acrosoma fue una de las estructuras más afectadas por la criopreservación (P<0,001). En conclusión, el presente estudio confirma que el estrés anisosmótico afecta la célula espermática de manera importante, comprometiendo los valores referenciales que cuantifican la calidad seminal, sobretodo la MA y MP.
Descargas
La descarga de datos todavía no está disponible.
Citas
Anel, L., P. D. Paz, M. Álvarez, C. A. Chamorro, J. C. Boixo, A. Manso, M. González, M. Kaabi, M. and E. Anel. 2003. Field and in vitro assay of three methods for freezing ram semen. Theriogenology 60: 1293-1308.
Chan, P., D. R. Tredway, B. C. Su, J. Corselle and S. Ren. 1991. Combined supravital stains and hypoosmotic swelling test. Human Reprod. 6(8): 1115-1118.
Chen, F., L., Gao, H., Zhou, L., Gou, Q., Chen, Y., Gan, X., Sun, Q., Li, and K., Wrang. 2019. The association between sperm head elongongation and semen quality. Andrology 1-6.
Córdova-Izquierdo, A., M. Córdova-Jiménez, C. Córdova-Jiménez y J. Guerra-Liera. 2008. Procedimientos para aumentar el potencial reproductivo en ovejas y cabras Rev. Vet. 19(1): 67-79.
Dacheux, F., and J. Dacheux. 2001. L´épididyme et les glandes annexes. In: La reproductionchez les mammifères et l`Homme. Coordonnateurs: Charles Thibault et Marieclaire Levasseur. Ellipses Édition Marketing, S.A. INRA. Paris, France. Chapitre 14: 455-468.
Díaz, A. R., F. Martínez-Pastor, E. Anel, M. Álvarez, L. Anel, J. C. Boixo, J. D. Muro y P. de Paz. 2012. Variación de las técnicas de valoración acrosomal en distintas fases de la conservación de semen ovino. Producción ovina y caprina N° XXVII SEOC: 1012-1015.
Dzuik, J. 1996. Factors that influence the proportion of offspring sired by a male following heterospermic insemination. Anim. Reprod. Sci. 43: 277-282.
Ewel, J., A. Madriz y A. Tosi. 1968. Zonas de vida de Venezuela. 2da. Edición. Editorial Sucre, Caracas. 65 p.
Foote, R. H. and J. E. Parks. 1993. Factors affecting preservation and fertility of bull semen: A brief review. Reprod. Fert. Dev. 5: 665-673.
Garcia, W. 2014. Optimización de los protocolos de criopreservación de semen ovino de las razas autóctonas en peligro de extinción Xisqueta y Aranesa. Tesis Doctoral. Universidad Autónoma de Barcelona. España. 315 p. https://ddd.uab.cat/record/127501
Giraud, M., C. Motta, D. Boucher and G. Grizard. 2000. Membrane fluidity predicts the outcome of criopreservation of human spermatozoa. Human Reproduction 15(10): 2160-2164.
Guillaume, M., O. Sabido, P. Durand and R. Levy. 2004. Cryopreservation induces an apoptosis-like mechanism in bull sperm. Biol. Reprod. 71: 28-37.
González-Villalobos, D. 2017. Cinética del espermatozoide de cerdo y su utilidad como método de evaluación de la calidad seminal. Trabajo de Ascenso categoría de Profesor Titular. Universidad del Zulia. Facultad de Ciencias Veterinarias. Maracaibo, Venezuela. 63 pp.
Hammerstedt, R. H., J. K. Graham and J. P. Nolan. 1990. Cryopreservation of mammalian sperm: what we ask them to survive. J. Androl. 11: 73-88.
Hernández, P. J. E., R. F. Fernández, S. J. L. Rodríguez, R. E. Juárez, M. Y. G. Soto and R. A. D. García. 2012. Effect of cryopreservation of sheep semen related to its viability and acrosomal status. Rev. Salud Anim. 34(2): 78-83.
Januskauskas, A. and H. Rodríguez-Martínez. 2000. Assessment of sperm viability by measurement of ATP, membrane integrity and motility in frozen/thawed bull semen. Acta Vet. Scand. 36: 571-574.
Jeyendran, R. S., H. H. Van der Ven, M. Pérez-Peláez, B. J. Crabo and L. J. Zaneveld. 1984. Development of an assay to asses the functional integrity of the human sperm membrane and its relationship to other semen characteristics. J. Reprod. Fertil. 70: 219-228.
Jin, M., E. Fujiwara, Y. Kakiuchi, M. Okabed, Y. Satouh, S. Baba, K. Chiba and N. Hirohashia. 2011. Most fertilizing mouse spermatozoa begin their acrosome reaction before contact with the zona pellucida during in vitro fertilization. PNAS 108(12): 4892-4896.
Leahy T., J. I. Marti, N. Mendoza, R. Pérez-Pérez, T. Muino-Blanco, J. A. Cebrián-Pérez, G. Evans and W. M. C. Maxwell. 2010. High pre-freezing dilution improves post-thaw function of ram spermatozoa. Anim. Reprod. Sci. 119: 137-146.
Nava-Trujillo, H., A. Quintero-Moreno, C. Osorio, J. Rubio-Guillén, F. Carrillo and G. Finol-Parra. 2012. Use of water test to assess the sperm membrane functional integrity in cryopreserved bull semen. Rev. Científ. FCV-LUZ. Vol. XXI (3): 211-214.
Peris-Frau, P., A., Soler, M., Iniesta, A., Martín, I., Sanchéz, D. Medina, M., Fernández and O., García. 2020. Sperm cryodamage in rumiants: Understanding the molecular changes induced by the cryopreservation process to optimize sperm quality. Int. J. Mol. Sci.: 21: 2781-2008.
Pursel, V. G., L. A. Johnson. 1974. Glutaraldehyde fixation of boar spermatozoa for acrosome evaluation. Theriogenology. 1(2):63-68.
Quintero-Moreno, A., T. Rigau, J. E. Rodríguez-Gil. 2004. Regression analyses and motile sperm subpopulation structure study as improving tools in boar semen quality analyses. Theriogenology. 61:673-690.
Quintero, A., J. Rubio, T. Rigau y J. E. Rodríguez-Gil. 2005. El test de resistencia hiposmótica: un test promisorio para medir la integridad de la membrana espermática del cerdo. Maracaibo, Venezuela. Arch. Lat. Prod. Anim. 4 p.
Quintero-Moreno A., J. Rubio-Guillén, D. González-Villalobos, J. C. Gutiérrez, N. Madrid-Bury, J. J. Garde. 2011. Identification of cryodamage on plasma membrane Integrity in bull spermatozoa and its relationship with field fertility. Revista Científica, FCV-LUZ XXI. (5): 403-407.
Rodríguez-Martínez, H. 2000. Evaluación de semen congelado: Métodos Tradicionales y de actualidad. Internacional Veterinary Infiormation Service (www.ivis.org), Ithaca, New Cork, USA.
Rubio-Guillén, J. 2006. Efecto del proceso de criopreservación sobre la calidad seminal y fertilidad de toros Holstein, Brahman y sus mestizos. Tesis de Maestría. Facultad de Agronomía, Universidad del Zulia. 103 p.
Rubio-Guillén, J., D. González y A. Quintero-Moreno. 2009. Efecto de la criopreservación sobre la integridad de la membrana plasmática y acrosomal de espermatozoides de toros. Rev. Cient. FCV-LUZ. XIX (4): 382-389.
Rubio-Guillén, J., O. Portillo-Guevara, M. Montero, A. Velásquez, W. Zalahne, D. González-Villalobos, P. Torres-Rodríguez, A. Quintero-Moreno. 2013. Integridad de la membrana plasmática de espermatozoides recién colectados de ovinos en condiciones de trópico seco. XV Jornadas sobre Producción Animal. AIDA. Tomo I: 407-409.
Rubio-Guillén, J., C. Osorio y L. Yamarte. 2014a. Innovadora prueba de valoración seminal ovina utilizando tres (3) test de fácil aplicación en campo. 3er Congreso Venezolano de Ciencia, tecnología e innovación. Del 27-29/11/14. Caracas, Venezuela.
Rubio-Guillén, J., A. Quintero-Moreno, D. González y C. Osorio. 2014b. Integridad estructural y funcional de la membrana plasmática de espermatozoides recién colectados de ovinos tropicales. II Encuentro Andino de Ciencia, Tecnología e innovación. Del 22-24/10/14. Mérida, Venezuela.
Rubio-Guillén, J., M. Montero, O. Portillo, D. González, J. Aranguren-Méndez, N. Madrid-Bury, Y. Villasmil y A. Quintero-Moreno. 2012. Comparación entre dos grupos raciales de ovinos tropicales mediante pruebas de viabilidad espermática. XIII Jornadas Científico Técnicas de la Facultad de Agronomía LUZ. 21-23/11/12. Maracaibo, Venezuela. 55 p.
Rubio-Guillén, 2017. Efecto de la criopreservación sobre la integridad estructural y funcional de espermatozoides ovinos tropicales. Tesis Doctoral. Facultad de Agronomía de la Universidad del Zulia. 137 p.
SAS Institute. 2000. SAS user guide: statics. Versión 8.0 Edition SAS institute Inc. Cary, NY. 530 p.
Schilling, E. and M. Vengust. 1985. Determination of osmotic resistance of boar spermatozoa and its relationship with the storage ability of semen samples. Zuchthygiene 20: 61-78.
Tesarik, J., C. Mendoza, J. P. Ramirez, J. Moos. 1993. Solubilized human zona pellucida competes with a fucosylated neoglycoprotein for binding sites on the human sperm surface. Fertility & Sterility. 60(2): 344-350.
Utt, M. 2015 Prediction of bull fertility. Anim. Reprod. Sci. Available in: http://dx.doi.org/10.1016/j.anireprosci.2015.12.011
Valdez, D. 2013. Efecto del dodecil sulfato ionico adicionado a un diluyente libre de yema de huevo sobre la calidad del semen congelado ovino. Tesis de Maestría. Universidad de Cuenca. Ecuador. 74 p. Disponible en: http://dspace.ucuenca.edu.ec/handle/123456789/500.
Vargas, P. 2015. Efecto del factor dilutor y raza en la integridad de la membrana espermática y acrosomal en semen crioconservado de carneros. Tesis de Grado a Médico Veterinario. Universidad Nacional del Altiplano. 81 p. Disponible en: http://repositorio.unap.edu.pe/handle/UNAP/2236.
Varisli O., C. Uguz, C. Agca and Y. Agca. 2009. Motility and acrosomal integrity comparisons between electro-ejaculated and epididymal ram sperm after exposure to a range of anisosmotic solutions, cryoprotective agents and low temperatures. Anim. Reprod. Sci. 110: 256-268.
Vera-Muñoz, O. 2001. Evaluación seminal comparativa pre y postcongelación en machos bovinos. En: Reproducción bovina. González-Stagnaro C. (Ed.). Edics. Astro Data S.A. Fundación GIRARZ. Maracaibo-Venezuela. Cap: XII: 1-11.
Vera-Muñoz, O., 2008. Fisiología de los espermatozoides bovinos. En: Desarrollo sostenible de ganadería doble propósito. Gonzalez-Stagnaro C., E. Soto-Belloso (Eds.). Fundación GIRARZ. Ediciones ASTRODA S.A. Sección 5(40): 495-504.
Villasmil, Y., J. Aranguren, N. Madrid-Bury, D. González, J. Rubio-Guillén, C. González-Stagnaro, M. Portillo y F. Yañez. 2011. Edad y peso a la pubertad de ovinos cruzados en el Estado Zulia, Venezuela. Actas Iberoamericanas de Conservación Animal AICA. 419-422.
Yanagimachi, R. 1994. Mammalian fertilization. In: Physiology of reproduction. Knobil, E. and J.D. Neill (Eds.). 2nd edition. Raven Press, New York. p. 189-317.
Yániz, J. L., C. Soler, P. Recreo, T. Carretero and A. Bono. 2015. Sperm population structure in high and low field fertility rams. Anim. Reprod. Sci.156: 128-134.
Zhu, W. and X. Liu. 2000. Cryodamage to plasma integrity in head and tail region human sperm. Asian J. Androl. 2: 135-138.
Chan, P., D. R. Tredway, B. C. Su, J. Corselle and S. Ren. 1991. Combined supravital stains and hypoosmotic swelling test. Human Reprod. 6(8): 1115-1118.
Chen, F., L., Gao, H., Zhou, L., Gou, Q., Chen, Y., Gan, X., Sun, Q., Li, and K., Wrang. 2019. The association between sperm head elongongation and semen quality. Andrology 1-6.
Córdova-Izquierdo, A., M. Córdova-Jiménez, C. Córdova-Jiménez y J. Guerra-Liera. 2008. Procedimientos para aumentar el potencial reproductivo en ovejas y cabras Rev. Vet. 19(1): 67-79.
Dacheux, F., and J. Dacheux. 2001. L´épididyme et les glandes annexes. In: La reproductionchez les mammifères et l`Homme. Coordonnateurs: Charles Thibault et Marieclaire Levasseur. Ellipses Édition Marketing, S.A. INRA. Paris, France. Chapitre 14: 455-468.
Díaz, A. R., F. Martínez-Pastor, E. Anel, M. Álvarez, L. Anel, J. C. Boixo, J. D. Muro y P. de Paz. 2012. Variación de las técnicas de valoración acrosomal en distintas fases de la conservación de semen ovino. Producción ovina y caprina N° XXVII SEOC: 1012-1015.
Dzuik, J. 1996. Factors that influence the proportion of offspring sired by a male following heterospermic insemination. Anim. Reprod. Sci. 43: 277-282.
Ewel, J., A. Madriz y A. Tosi. 1968. Zonas de vida de Venezuela. 2da. Edición. Editorial Sucre, Caracas. 65 p.
Foote, R. H. and J. E. Parks. 1993. Factors affecting preservation and fertility of bull semen: A brief review. Reprod. Fert. Dev. 5: 665-673.
Garcia, W. 2014. Optimización de los protocolos de criopreservación de semen ovino de las razas autóctonas en peligro de extinción Xisqueta y Aranesa. Tesis Doctoral. Universidad Autónoma de Barcelona. España. 315 p. https://ddd.uab.cat/record/127501
Giraud, M., C. Motta, D. Boucher and G. Grizard. 2000. Membrane fluidity predicts the outcome of criopreservation of human spermatozoa. Human Reproduction 15(10): 2160-2164.
Guillaume, M., O. Sabido, P. Durand and R. Levy. 2004. Cryopreservation induces an apoptosis-like mechanism in bull sperm. Biol. Reprod. 71: 28-37.
González-Villalobos, D. 2017. Cinética del espermatozoide de cerdo y su utilidad como método de evaluación de la calidad seminal. Trabajo de Ascenso categoría de Profesor Titular. Universidad del Zulia. Facultad de Ciencias Veterinarias. Maracaibo, Venezuela. 63 pp.
Hammerstedt, R. H., J. K. Graham and J. P. Nolan. 1990. Cryopreservation of mammalian sperm: what we ask them to survive. J. Androl. 11: 73-88.
Hernández, P. J. E., R. F. Fernández, S. J. L. Rodríguez, R. E. Juárez, M. Y. G. Soto and R. A. D. García. 2012. Effect of cryopreservation of sheep semen related to its viability and acrosomal status. Rev. Salud Anim. 34(2): 78-83.
Januskauskas, A. and H. Rodríguez-Martínez. 2000. Assessment of sperm viability by measurement of ATP, membrane integrity and motility in frozen/thawed bull semen. Acta Vet. Scand. 36: 571-574.
Jeyendran, R. S., H. H. Van der Ven, M. Pérez-Peláez, B. J. Crabo and L. J. Zaneveld. 1984. Development of an assay to asses the functional integrity of the human sperm membrane and its relationship to other semen characteristics. J. Reprod. Fertil. 70: 219-228.
Jin, M., E. Fujiwara, Y. Kakiuchi, M. Okabed, Y. Satouh, S. Baba, K. Chiba and N. Hirohashia. 2011. Most fertilizing mouse spermatozoa begin their acrosome reaction before contact with the zona pellucida during in vitro fertilization. PNAS 108(12): 4892-4896.
Leahy T., J. I. Marti, N. Mendoza, R. Pérez-Pérez, T. Muino-Blanco, J. A. Cebrián-Pérez, G. Evans and W. M. C. Maxwell. 2010. High pre-freezing dilution improves post-thaw function of ram spermatozoa. Anim. Reprod. Sci. 119: 137-146.
Nava-Trujillo, H., A. Quintero-Moreno, C. Osorio, J. Rubio-Guillén, F. Carrillo and G. Finol-Parra. 2012. Use of water test to assess the sperm membrane functional integrity in cryopreserved bull semen. Rev. Científ. FCV-LUZ. Vol. XXI (3): 211-214.
Peris-Frau, P., A., Soler, M., Iniesta, A., Martín, I., Sanchéz, D. Medina, M., Fernández and O., García. 2020. Sperm cryodamage in rumiants: Understanding the molecular changes induced by the cryopreservation process to optimize sperm quality. Int. J. Mol. Sci.: 21: 2781-2008.
Pursel, V. G., L. A. Johnson. 1974. Glutaraldehyde fixation of boar spermatozoa for acrosome evaluation. Theriogenology. 1(2):63-68.
Quintero-Moreno, A., T. Rigau, J. E. Rodríguez-Gil. 2004. Regression analyses and motile sperm subpopulation structure study as improving tools in boar semen quality analyses. Theriogenology. 61:673-690.
Quintero, A., J. Rubio, T. Rigau y J. E. Rodríguez-Gil. 2005. El test de resistencia hiposmótica: un test promisorio para medir la integridad de la membrana espermática del cerdo. Maracaibo, Venezuela. Arch. Lat. Prod. Anim. 4 p.
Quintero-Moreno A., J. Rubio-Guillén, D. González-Villalobos, J. C. Gutiérrez, N. Madrid-Bury, J. J. Garde. 2011. Identification of cryodamage on plasma membrane Integrity in bull spermatozoa and its relationship with field fertility. Revista Científica, FCV-LUZ XXI. (5): 403-407.
Rodríguez-Martínez, H. 2000. Evaluación de semen congelado: Métodos Tradicionales y de actualidad. Internacional Veterinary Infiormation Service (www.ivis.org), Ithaca, New Cork, USA.
Rubio-Guillén, J. 2006. Efecto del proceso de criopreservación sobre la calidad seminal y fertilidad de toros Holstein, Brahman y sus mestizos. Tesis de Maestría. Facultad de Agronomía, Universidad del Zulia. 103 p.
Rubio-Guillén, J., D. González y A. Quintero-Moreno. 2009. Efecto de la criopreservación sobre la integridad de la membrana plasmática y acrosomal de espermatozoides de toros. Rev. Cient. FCV-LUZ. XIX (4): 382-389.
Rubio-Guillén, J., O. Portillo-Guevara, M. Montero, A. Velásquez, W. Zalahne, D. González-Villalobos, P. Torres-Rodríguez, A. Quintero-Moreno. 2013. Integridad de la membrana plasmática de espermatozoides recién colectados de ovinos en condiciones de trópico seco. XV Jornadas sobre Producción Animal. AIDA. Tomo I: 407-409.
Rubio-Guillén, J., C. Osorio y L. Yamarte. 2014a. Innovadora prueba de valoración seminal ovina utilizando tres (3) test de fácil aplicación en campo. 3er Congreso Venezolano de Ciencia, tecnología e innovación. Del 27-29/11/14. Caracas, Venezuela.
Rubio-Guillén, J., A. Quintero-Moreno, D. González y C. Osorio. 2014b. Integridad estructural y funcional de la membrana plasmática de espermatozoides recién colectados de ovinos tropicales. II Encuentro Andino de Ciencia, Tecnología e innovación. Del 22-24/10/14. Mérida, Venezuela.
Rubio-Guillén, J., M. Montero, O. Portillo, D. González, J. Aranguren-Méndez, N. Madrid-Bury, Y. Villasmil y A. Quintero-Moreno. 2012. Comparación entre dos grupos raciales de ovinos tropicales mediante pruebas de viabilidad espermática. XIII Jornadas Científico Técnicas de la Facultad de Agronomía LUZ. 21-23/11/12. Maracaibo, Venezuela. 55 p.
Rubio-Guillén, 2017. Efecto de la criopreservación sobre la integridad estructural y funcional de espermatozoides ovinos tropicales. Tesis Doctoral. Facultad de Agronomía de la Universidad del Zulia. 137 p.
SAS Institute. 2000. SAS user guide: statics. Versión 8.0 Edition SAS institute Inc. Cary, NY. 530 p.
Schilling, E. and M. Vengust. 1985. Determination of osmotic resistance of boar spermatozoa and its relationship with the storage ability of semen samples. Zuchthygiene 20: 61-78.
Tesarik, J., C. Mendoza, J. P. Ramirez, J. Moos. 1993. Solubilized human zona pellucida competes with a fucosylated neoglycoprotein for binding sites on the human sperm surface. Fertility & Sterility. 60(2): 344-350.
Utt, M. 2015 Prediction of bull fertility. Anim. Reprod. Sci. Available in: http://dx.doi.org/10.1016/j.anireprosci.2015.12.011
Valdez, D. 2013. Efecto del dodecil sulfato ionico adicionado a un diluyente libre de yema de huevo sobre la calidad del semen congelado ovino. Tesis de Maestría. Universidad de Cuenca. Ecuador. 74 p. Disponible en: http://dspace.ucuenca.edu.ec/handle/123456789/500.
Vargas, P. 2015. Efecto del factor dilutor y raza en la integridad de la membrana espermática y acrosomal en semen crioconservado de carneros. Tesis de Grado a Médico Veterinario. Universidad Nacional del Altiplano. 81 p. Disponible en: http://repositorio.unap.edu.pe/handle/UNAP/2236.
Varisli O., C. Uguz, C. Agca and Y. Agca. 2009. Motility and acrosomal integrity comparisons between electro-ejaculated and epididymal ram sperm after exposure to a range of anisosmotic solutions, cryoprotective agents and low temperatures. Anim. Reprod. Sci. 110: 256-268.
Vera-Muñoz, O. 2001. Evaluación seminal comparativa pre y postcongelación en machos bovinos. En: Reproducción bovina. González-Stagnaro C. (Ed.). Edics. Astro Data S.A. Fundación GIRARZ. Maracaibo-Venezuela. Cap: XII: 1-11.
Vera-Muñoz, O., 2008. Fisiología de los espermatozoides bovinos. En: Desarrollo sostenible de ganadería doble propósito. Gonzalez-Stagnaro C., E. Soto-Belloso (Eds.). Fundación GIRARZ. Ediciones ASTRODA S.A. Sección 5(40): 495-504.
Villasmil, Y., J. Aranguren, N. Madrid-Bury, D. González, J. Rubio-Guillén, C. González-Stagnaro, M. Portillo y F. Yañez. 2011. Edad y peso a la pubertad de ovinos cruzados en el Estado Zulia, Venezuela. Actas Iberoamericanas de Conservación Animal AICA. 419-422.
Yanagimachi, R. 1994. Mammalian fertilization. In: Physiology of reproduction. Knobil, E. and J.D. Neill (Eds.). 2nd edition. Raven Press, New York. p. 189-317.
Yániz, J. L., C. Soler, P. Recreo, T. Carretero and A. Bono. 2015. Sperm population structure in high and low field fertility rams. Anim. Reprod. Sci.156: 128-134.
Zhu, W. and X. Liu. 2000. Cryodamage to plasma integrity in head and tail region human sperm. Asian J. Androl. 2: 135-138.
Publicado
2021-10-01
Cómo citar
Rubio-Guillén, J., Osorio-Meléndez, C., González-Villalobos, D., Nava-Trujillo, H., & Quintero-Moreno, A. (2021). Efecto del estrés anisosmótico sobre la integridad estructural y funcional de la membrana plasmática y acrosomal de espermatozoides ovinos. Revista De La Facultad De Agronomía De La Universidad Del Zulia, 38(4), 993-1015. Recuperado a partir de https://produccioncientificaluz.org/index.php/agronomia/article/view/36806
Número
Sección
Producción Animal
Derechos de autor https://creativecommons.org/licenses/by-nc/4.0/
Esta obra está bajo licencia internacional Creative Commons Reconocimiento-NoComercial-CompartirIgual 4.0.
