Micropropagación de Pelargonium odoratissimum (L.) L’Her., a través de explantes de hojas y pecíolos

  • Asghar Ebrahimzadeh Assitant Professor, Department of Horticultural Sciences, Faculty of Agriculture, University of Maragheh, Iran https://orcid.org/0000-0002-8865-6447
  • Maliheh Fathollahzadeh Former Master student, Department of Horticultural Sciences, Faculty of Agriculture, University of Maragheh, Iran
  • Mohammad Bagher Hassanpouraghdam Associate Professor, Department of Horticultural Sciences, Faculty of Agriculture, University of Maragheh, Iran https://orcid.org/0000-0001-7130-2426
  • Mohammad Ali Aazami Mavaloo Assitant Professor, Department of Horticultural Sciences, Faculty of Agriculture, University of Maragheh, Iran
Palabras clave: explantes nodales, MS, organogénesis de brotes, BAP, ANA, segmentos foliares

Resumen

Pelargonium odoratissimum (L.) L’Her es una planta de complejo enraizamiento y los métodos comunes de propagación mediante esquejes de tallos no presentan un resultado positivo con esta especie. Acorde a lo anterior, han realizado ensayos empleando métodos de cultivo de tejidos para la propagación a gran escala de esta especie de alto valor. Se emplearon: hojas completas, segmentos de hojas y secciones de pecíolo; derivadas de explantes nodales producidos in vitro para la optimización de la micropropagación de P. odoratissimum. Las combinaciones de tratamiento utilizadas fueron: MS y 1/2 MS enriquecidos con 6-bencilaminopurina, BAP (1, 1.5, 2 y 4.5 mg.L-1) y ácido naftalenacético, NAA (0.1, 1 y 1.5 mg.L-1). Al utilizar segmentos foliares, se observó menor incidencia de pardeamiento y mayor callogénesis. El mayor número de brotes se obtuvo con el medio de cultivo que contenía 1,5 mg.L-1 BAP y 1 mg.L-1 NAA. Los medios de cultivo de 2 mg.L-1 BAP + 0.1 mg.L-1 NAA, presentaron los mismos resultados para los explantes de peciolo. Las hojas completas mostraron los mejores resultados el emplear el medio de 1 mg.L-1 BAP + 1 mg.L-1 NAA. El tratamiento de 0.2 mg.L-1 NAA causó el mayor porcentaje de enraizamiento y la mayor media de datos para el número y longitud de raíces. Las plántulas enraizadas se transfirieron a materas utilizando como sustrato una mezcla de turba-musgo y perlita, con una relación de mezcla 1:1. El acondicionamiento de las plántulas presentaron una tasa de superviviencia 90 % en el invernadero. El protocolo empleado presento altas tasas de efectividad como medio de propagación para su extensión.

Descargas

La descarga de datos todavía no está disponible.

Citas

Agarwal, R.K. and A.S. Ranu. 2000. Regeneration of plantlets from leaf and petiole explants of Pelargonium × hortorum. In Vitro Cell. Dev. Biol. Plant. 36:392-397.

Arshad, M., J. Silvestre, G. Merlina, C. Dumat, E. Pinelli and J. Kellerhoff. 2012. Thidiazuron- induced shoot organogenesis from mature leaf explants of scented Pelargonium capitatum cultivars. Plant. Cell. Tiss. Org. Cult. 108: 315-322.

Benazir, J.F., R. Suganthi, P. Chandrika and B. Mathithumilan. 2013. In vitro regeneration and transformation studies on Pelargonium graveolens (Geranium) an important medicinal and aromatic plant. J. Med. Plant Res. 7 (38): 2815-2822.

Bhuse, V.H., B.L. Lad, D.K. Patil, and V.M. Karade. 2003. Effect of time of planting, type of cutting and plant growth regulators on rooting in Pelargonium graveolens L. Herrit. Indian J. Agric. Res. 3:29-33

Boase, M.R., J.M. Bradley and N.K. Borst. 1998. An improved method for transformation of regal pelargonium (Pelargonium x domesticum Dubonnet) by Agrobacterium tumefaciens. Plant. Sci. 139:59–69.

Brown, J.T. and B.V. Charlwood. 1986. The accumulation of essential oils by tissue cultures of Pelargonium fragrans (Willd). Fed. Europ. Biochem. Soc. 204 (1): 117- 120.

Desilets, H., Y. Desjardins and R. Belanger. 1993. Clonal propagation of Pelargonium x hortorum through tissue culture: Effects of salt dilution and growth regulator concentration. Can. J. Plant. Sci. 73: 871-878.

Dunbar, K.B. and C.T. Stephens. 1989. Shoot regeneration of hybrid seed geranium (Pelargonium x hortorum) and regal geranium (Pelargonium x domesticum) from primary callus cultures. Plant Cell, Tiss. Org. Cult. 19: 13–21.

Ghanem, S. A., U.I. Aly, A.A. El-kazzaz, A. Abdel-Samad and N.M. Arafa. 2008. In vitro regeneration of Pelargonium graveolens. J. Genet. Eng. Biotechnol. 6 (2): 15-18.

Gharib, F.A.L. 2005. Changes in regeneration and oil accumulation of Pelargonium nervosum under various culture condition. J. Bio. Sci. 5(5): 670-677.

Gupta, R., S.K. Gupta, S. Banerjee, G.R. Mallavarapu and S. Kumar. 2002. Micropropagation of Elit cultivars of rose- scented Geranium (Pelargonium graveolens L.’ Herit.) for industrial production of propagules. Indian. J. Biotechnol. 1: 286-291.

Hassanein, A. and N. Dorion. 2005. Efficient plant regeneration system from leaf discs of zonal (Pelargonium x Hortorum) and two scented (P. capitatum and P. graveolens) geraniums. Plant. Cell. Tiss. Org. Cult. 83: 231-240.
Linsmaier, E.M., F. Skoog. 1965. Organic growth factor requirements of tobacco tissue cultures. Physiol. Plant. 18: 100–127.

Murashige, T. and F. Skoog. 1962. A revised medium for rapid growth and bio-assays with tobacco tissue cultures. Physiol. Plant. 15: 473-497.

Rao, P.V.L. 1994. In vitro plant regeneration of scented- leaved geranium Pelargonium graveolens. Plant. Sci. 98:193-198.

Saxena, G., S. Banerjee, L. Rahman, G.R. Mallavarapu, S. Sharma and S. Kumar. 2000. An efficient in vitro procedure for micropropagation and generation of somaclones of rose scented Pelargonium. Plant. Sci. 155: 133–140.

Skoog, F. and C.O. Miller. 1957. Chemical regulation of growth and organ formation in plant tissues cultured in vitro. Symp. Soc. Exp. Biol. 11: 118-131.

SPSS software. 2012. SPSS user’s guide, v. 21. IBM Corporation. New York, NY, USA.

Sukhumpinij, P., F. Kakihara and M. Kato. 2010. In vitro regeneration from mature leaf explants of Pelargonium rapaceum (L.) L’Hérit. Sci. Hortic. 126: 385–389.

Tembe, R.P. and M. Deodhar. 2010. Clonal propagation different cultivars of Pelargonium graveolens (L’ Herit) viz Reunion, Bourbon and Egyptian. Biotechnol. 9 (4): 492–498.

Wojtania, A., E. Gabryszewska and A. Marasek. 2004. Regeneration of Pelargonium × hederaefolium ‘Bonete’ from petiole explants. Acta. Physiol. Plant. 26 (3): 255-262.

Yi QY, X., K.G. Jiang and M.H.T. Ren. 2010. Study on in vitro shoot culture of Pelargonium graveolens and its production. J. S. China. J. Agri. 2: 59-67.

Zhou, J., G. Ma, E. Bunn and X. Zhang. 2007. In vitro shoot organogenesis from Pelargonium × Citrosum Vanleenii leaf and petiole explants. Flori. Orna. Biotech. 1(2): 147-149.

Zuraida, A.R., M.A. Shukri, O. Ayu Nazreena and Z. Zamri. 2013. Improved micropropagation of biopesticidal plant, Pelargonium radula via direct shoot regeneration. Am. J. Res. Commun. 1(1): 1-12.
Publicado
2021-03-15
Cómo citar
Ebrahimzadeh, A., Fathollahzadeh, M., Bagher Hassanpouraghdam, M., & Aazami Mavaloo, M. A. (2021). Micropropagación de Pelargonium odoratissimum (L.) L’Her., a través de explantes de hojas y pecíolos. Revista De La Facultad De Agronomía De La Universidad Del Zulia, 38(2), 261-278. Recuperado a partir de https://produccioncientificaluz.org/index.php/agronomia/article/view/35499
Sección
Producción Vegetal. Crop Production. Produção Vegetal