Efecto de tres bioestimulantes en el comportamiento morfológico y productivo del cultivo del rábano (Raphanus sativus L.)

• Alexander. Calero Hurtado Doctorante Universidad Estatal Paulista “Julio de Mesquita Filho”. Via de Acesso Prof. Paulo Donato Castellane s/n, CP 14884-900, Jaboticabal, Sao Paulo, Brasil
• Yanery. Perez Diaz Universidad de Sancti Spíritus “José Marti Perez”. Ave de los Martires #360. CP 60100. Sancti Spiritus, Cuba.
• Kolima. Pena Calzada Universidad de Sancti Spíritus “José Marti Perez”. Ave de los Martires #360. CP 60100. Sancti Spiritus, Cuba.
• Elieni. Quintero Rodriguez Empresa Agropecuaria Agroindustrial “Melanio Hernandez”. Carretera a Tuinucu, CP 62300. Taguasco, Sancti Spiritus, Cuba.
• Dilier. Olivera Viciedo Doctorante Universidad Estatal Paulista “Julio de Mesquita Filho”. Via de Acesso Prof. Paulo Donato Castellane s/n, CP 14884-900, Jaboticabal, Sao Paulo, Brasil

Abstract

Con el objetivo de evaluar el efecto de tres bioestimulantes en el comportamiento morfológico y productivo del cultivo de rábano, se desarrolló un experimento en áreas del organopónico “El Estadio” Sancti Spíritus, Cuba, durante los meses de febrero a abril del 2016. Los tratamientos fueron: ME-50 (50 mL.L-1), humus lixiviado, (100 mL.L-1), Biobras-16 (0,012 L.ha-1) y un control con agua. Las observaciones de los parámetros morfoagronómicos se efectuó sobre 45 plantas por tratamiento y las variables fueron: promedio de hojas por plantas, altura de la planta (cm), diámetro promedio de las raíces (cm), producción de biomasa (g.planta-1), porcentaje de raíces tuberosas afectadas (%) y el rendimiento (kg.m-2). Los resultados mostraron que la utilización de los tres bioestimulantes en la producción del cultivo del rábano en condiciones de organopónico fue beneficiosa, ya que mostró efectos positivos en el incremento de la producción media de hojas por planta, en el diámetro de las raíces, la producción de biomasa y el rendimiento en más de 1,05 kg.m-2, además el tratamiento con ME-50 redujo el porcentaje de raíces tuberosas dañadas en un 50 % menos en relación al control.

References

Africano, K., y E. Pinzón. 2014. Comportamiento fisiológico de plantas de rábano (Raphanus sativus L.) sometidas a estrés por salinidad. Conexión Agropecuaria JDC. 4 (2): 13– 24.

Álvarez, B. I. E. I. Reynaldo, R. Cartaya y V. Terán. 2013. Efectos de una mezcla de oligogalacturónidos en hortalizas de importancia económica. Cultiv. Trop.32(3): 69-74.

Álvarez, J., D. Núñez, R. Liriano y G. Terence. 2012. Evaluación de la aplicación de microorganismos eficientes en col de repollo (Brassica oleracea L.) en condiciones de organopónico semiprotegido. Centro Agrícola. 39(4): 27–30.

Álvarez, M., F. Tucta, E. Quispe y V. Meza. 2018. Incidencia de la inoculación de microorganismos benéficos en el cultivo de fresa (Fragaria sp.) Sci. Agropecu. 9(1): 33–42.

Arias, A. 2010. Microorganimos eficientes y su beneficio para la agricultura y el medio ambiente. Journal de Ciencia e Ingeniería. 02(02): 42–45.

Bajguz, A., and A. Tretyn. 2003. The chemical structures and occurrence of brassinosteroids in plants, in: HAYAT, S., Ahmad, A. (Eds.), brassinosteroids bioactivity and crop productivity. Kluwer Academic Publishers, Aligarh, India, pp. 1–44.

Barbosa, J. C., y W. Maldonado Junior. 2014. AgroEstat - Sistema de análisis estadísticas para Ensayos Agronómicos. Versión 1.1.0.712. Jaboticabal, Departamento de Ciencias Exactas. Universidad Estatal Pualista “Júlio de Mesquita Filho”.

Calero, A., E. Quintero y Y. Pérez. 2017. Utilización de diferentes bioproductos en

la producción de frijol común (Phaseolus vulgaris L.). Agrotecnia de Cuba. 41(1): 1–13.

Calero, A., E. Quintero, D. Olivera, Y. Pérez, I. Castro, J. Jiménez y E. López. 2018. Respuesta de dos cultivares de frijol común a la aplicación foliar de microorganismos eficientes. Cultiv. Trop. 39(1): 5–10.

Calero, A., Y., Pérez y D. Pérez. 2016. Efecto de diferentes biopreparados combinado con FitoMas-E en el comportamiento agroproductivo del frijol común (Phaseolus vulgaris L.). Monfragüe Desarrollo Resiliente. 7(2): 161–176.

Criollo, H., y J García. 2009. Efecto de la densidad de siembra sobre el crecimiento de plantas de rábano (Raphanus sativus L.) bajo invernadero. Rev. Colomb. Cienc. Hort. 3(2): 210-222.

Elizondo, J. 2007. Producción y calidad de la biomasa de morera (Morus alba L.) fertilizada con diferentes abonos. Agromeso. 18(2): 255-261.

Farouk, S., y A. R. Amany. 2012. Improving growth and yield of cowpea by foliar application of chitosan under water stress. Egyptian Journal of Biology. 14(1): 14-16.

Fernández, P. 2012. Efecto de los bioestimulantes foliares en el cultivo del pepino (Cucumis sativus L.) SARIG-454 en casas de cultivo protegido. Investigación y Saberes. 1(2):44-52.

Field, R., B. A. Hawkins, H. V. Cornell, D. J. Currie, J. A. Diniz, J. F. Guégan and E. M. O’Brien. 2009. Spatial speciesrichness gradients across scales: a meta analysis. J. Biogeogr. 36(1): 132-147.

Fleitas, M., T. Benítez and R. Castillo. 2013. Evaluación del humus de lombriz y estiércol bovino en la prodcucción del rábano (Raphanus sativus L.) en condiciones de organopónico. Rev. Pakamuros 1, 2306–9805.

Gómez, R.; G. Lázaro y J. A. León. 2008. Producción de frijol (Phaseolus vulgaris L.) y rábano (Raphanus sativus L.) en huertos biointensivos en el trópico húmedo de Tabasco. Universidad y Ciencia, Trópico Humedo. 24(1): 11-20.

González, L. G., A. Falcón, M. C. Jiménez, L. Jiménez, J. Silvente y J. C. Terrero. 2015. Evaluación de tres dosis del bioestimulante Quitosana en el cultivo de pepino (Cucumis sativus L.) en un periodo tardío. Revista Amazónica. 1(2): 42-48.

Gutiérrez, F.A., R.C. García, R. Rincón, M. Abud, O. María, M.J. Cruz and L. Dendooven. 2008. Formulation of a liquid fertilizer for sorghum (Sorghum bicolor (L) Moench) using vermicompost leachate. Bioresource Technology 99 (14): 6174–6180.

Higa, T. 1997. Making a world of difference through the technology of effective microorganisms (EM). EM Technologies, Inc, 8 p.

INIFAT, (Manual de organopónicos y huertos intensivos). El Instituto de Investigaciones Fundamentales en Agricultura Tropical “Alejandro de Humboldt” (INIFAT). La Habana. Cuba. 2007. 183 p. ISBN 980-215-022-3.

Jarecki, M.K., C. Chong and R.P. Voroney. 2005. Evaluation of compost leachates for plant growth in hydroponic culture. J. Plant Nutr. 28(4): 651–667.

Kollárová, K,. and M. Zelko. 2007. Growth and anatomical parameters of adventitious roots formed on mung beans hypocotyls are correlated with galacto glucomannan oligosaccharides. New For. 33(3): 309-323.

Laguna, R. J., y J. C. Contreras. 2000. Efecto de biofertilizante (EM-BOKASHI) sobre el crecimiento y rendimiento del rábano. La Calera. 1(1): 26-29.

Leubner, G., 2001. Brassinosteroids and gibberellins promote tobacco seed

germination by distinct pathways. Planta. 213: 758–763.

Liriano, R., D. Núñez, L. Hernández y A. Castro. 2015. Evaluación de microorganismos eficientes y Trichoderma harzianum en la producción de posturas de cebolla (Allium cepa L.). Centro Agrícola. 42(2): 25–32.

López, E., A. Calero, Y. Gómez, Z., Gil, D., Henderson y J. Jimenez. 2017. Efecto agronómico del biosólido en cultivo de tomate (Solanum lycopersicum): control biológico de Rhizoctonia solani. Cultiv. Trop. 38(1): 13–23.

Luna, M., y J. Mesa. 2016. Microorganismos eficientes y sus beneficios para los agricultores. Agroecosistemas. 4(2): 31–40.

Martínez, L., L. Maqueira, M.C. Nápoles y M. Núñez. 2017. Efecto de bioestimulantes en el rendimiento de dos cultivares de frijol (Phaseolus vulgaris L.) biofertilizados. Cultiv. Trop. 38(2): 113–118.

Núñez, D.B., R. Liriano, Y. Pérez, I. Placeres y G. Sianeh. 2017. Respuesta de Daucus carota, L. a la aplicación de microorganismos nativos en condiciones de organopónico. Centro Agrícola. 44(2):29–35.

Olivera, D., L. Leiva, A. Calero y J.F. Meléndrez. 2015. Empleo de microorganismos nativos multipropósitos (MNM) en el comportamiento agro-productivo de cultivos hortícolas. Agrotecnia de Cuba. 39(7): 34–42.

Pant, A.P., T.J. Radovich, N. V. Hue, S.T. Talcott and K.A. Krenek. 2009. Vermicompost extracts influence growth, mineralnutrients, phytonutrients and antioxidant activity in pak choi (Brassica rapa cv. Bonsai,) grown under vermicompost and chemical fertiliser. J. Sci. Food Agric. 89(14): 2383–2392.

Pedraza, R. O. K. R. Teixeira, A. Fernández, I. García, B. E. Baca, R. Azcón, V. Baldani y R. Bonilla. 2010. Microorganismos que mejoran el crecimiento de las plantas y la calidad de los suelos. Corpoica Cienc. Tecnol. Agropecuaria. 11(2): 155-164.

Peña, K., J.C. Rodríguez, D. Olivera, P.F. Fuentes, J.F. Meléndrez. 2016. Prácticas agrícolas sostenibles que incrementan los rendimientos de diferentes cultivos en Sancti Spíritus, Cuba. Agron. Costarric. 40(2): 117–127.

Poelhman, J. M. 1988. Mejoramiento genético de las cosechas. 1ra edición. Ed. Ciencia y Técnica. México. 453 p. ISBN 978-96818-53-69-3.

Preciado, P., M. Fortis, J.L. García, E.O. Rueda, J.R. Esparza, A. Lara, M.A. Segura y J.A. Orozco. 2011. Evaluación de soluciones nutritivas orgánicas en la producción de tomate en invernadero. Interciencia. 36(9): 689–693.

Quintero, E., A. Calero, Y. Pérez y L. Enríquez. 2018. Efecto de diferentes bioestimulantes en el rendimiento del frijol común. Cent. Agricola. 45(3): 73–80.

Ravindran, B., J.W. Wong, A. Selvam and G. Sekaran. 2016. Influence of microbial diversity and plant growth hormones in compost and vermicompost from fermented tannery waste. Bioresour. Technol. 217: 200–204.

Restrepo, R. J. 2007. Manual práctico: El A, B, C de la agricultura orgánica y harina de piedras.1ra edición. Harinado rocas. Ed. SIMAS. Managua, Nicaragua, 91 p.ISBN: 978-99924-55-27-2.

Sotelo, L., J. A. Jiménez, A. Tarsicio, y M. C. Cueto. 2012. Microorganismos en crecimiento de rábano (Raphanus sativus L.). Biotecnol.Sector Agropecuario Agroind. 10(1): 21-31.

Reyes, Y., L.M. Mazorra, L. Martínez y M. Núñez. 2010. Efecto del análogo de brasinoesteroide (Biobras-16) en la germinación y el crecimiento inicial de las plantas de dos variedades de tomate en condiciones de estrés salino. Cultiv. Trop. 31(2): 103–109.

Rosabal, L., L. Martínez; Y. Reyes y M. Núñez. 2013. Resultados reliminares del efecto de la aplicación de Biobras-16® en el cultivo del frijol (Phaseolus vulgaris L.). Cultiv. Trop. 34 (3): 71-75.

Sallaku, G., I. Babaj, S. Kaciu and A Balliu. 2009. The influence of vermicompost on plant growth characteristics of cucumber (Cucumis sativus L.) seedlings under saline conditions. J. Food, Agric. Environ.

(3, 4): 869–872.

Sotelo, L.I., J.A. Jiménez, A. Tarsicio y M.C. Cueto. 2012. Efecto de inoculación de microorganismos en crecimiento de rábano (Raphanus sativus). Biotecnol. en el Sect. Agropecu. Agroindustrial. 10(1): 21–30.

Sudisha, J., G. R. Sharathchandra, W. K. Amruthesh, A. Kumar and S. H. Shekar. 2012. Pathogenesis related proteins in plant defense response. Plant Defense: Bological Control. 12(4): 379-403.

Tejada, M., J.L. González, M.T., Hernández y C. Garcia. 2008. Agricultural use of leachates obtained from two different vermicomposting processes. Bioresour. Technol. 99(14): 6228–6232.

Wajahatulah, K. 2009. Seaweed extracts as Biostimulants of plant growth and development. J. Plant Growth Regul. 28(4): 386-399.

Young, C., S. Cheol, S. Lee, H. Cho, and J. Stangoulis. 2011. Growth and physiological responses of Chinese cabbage and radish to long-term exposure to elevated carbon dioxide and temperature. Hort. Environ. Biotechnol. 52(4): 376-386.

Zhao, H.T., T.P. Li, Y. Zhang, J. Hu, Y.H. Bai, Y. H Shan and F. Ke. 2017. Effects of vermicompost amendment as a basal fertilizer on soil properties and cucumber yield and quality under continuous cropping conditions in a greenhouse. J. Soils Sedmients. 17: 2718–2730.