Evaluación in vitro de Trichoderma sp. Como biocontrolador de hongos aislados de la rizosfera de Passiflora edulis. / In vitro evaluation of Trichoderma sp. As a biocontroller of fungi isolated from the rhizosphere of Passiflora edulis.

Katiuska Acosta-Marcano, Lucia González, Iris Jiménez, Geomar Molina, Juan Escaleras, Katheryn Atencio

Resumen


RESUMEN

Lo sistemas agrícolas actuales propone biotecnología alternativas para el control de enfermedades de plantas producidas por hongos del suelo, siendo el uso del antagonista Trichoderma una de las herramientas más prometedoras y viable por la versatilidad y adaptabilidad a diferentes zonas agroecológicas. Con la finalidad de evaluar el efecto biocontrolador in vitro de Trichoderma nativos y comercial sobre hongos fitopatógenos de suelo de plantaciones del cultivo de parchita (Passiflora flavicarpa) del municipio Sucre, estado Zulia. Se estableció un ensayo en el Laboratorio de Microbiología Agrícola de la Facultad de Agronomía de la Universidad del Zulia. Se aislaron los hongos fitopatógenos y cepas de Trichoderma nativas presentes en muestras de suelo a través de la técnica de dilución en placa y cultivo trampa en granos de arroz. La actividad antagónica fue evaluada por la técnica del disco, determinándose crecimiento el crecimiento libre y dual de los antagonistas, grado de antagonismo y el porcentaje de inhibición del crecimiento radial del hongo patógeno (PICR). El hongo Trichoderma aislado ejerció un biocontrol efectivo sobre los hongos fitopatógenos aislados de la rizosfera del cultivo parchita mostrando una actividad antagónica con grado de inhibición de 1-3 y valores de PIRC de 51-78% en comparación con la cepa comercial cuyo valores PICR oscilaron entre 30-50,8%. La utilización de cepas nativas de Trichoderma se vislumbra con un alto potencial biocontralador en el cultivo de la parchita en condiciones in vitro, sin embargo, es necesario su correcta incorporación en condiciones de campo en sistemas de producción y condiciones agroecológicas.

ABSTRACT

Modern agriculture proposes alternative biotechnology for the control of plant diseases produced by soil fungi, the use of the Trichoderma antagonist being one of the most promising and viable tools due to the versatility and adaptability to different agro-ecological zones. In order to evaluate the in vitro biocontrol effect of native and commercial Trichoderma on phytopathogenic fungi of soil of plantations of the parchita (Passiflora flavicarpa) plantation of Sucre municipality, Zulia State. An essay was established in the Laboratory of Agricultural Microbiology of the Faculty of Agronomy of the University of Zulia. The phytopathogenic fungi and native Trichoderma strains present in soil samples were isolated through the technique of plate dilution and trap culture in rice grains. The antagonistic activity was evaluated by the disc technique, determining the growth of the free and dual growth of the antagonists, the degree of antagonism and the percentage of inhibition of the radial growth of the pathogenic fungus (PICR). The isolated Trichoderma fungus exerted an effective biocontrol on the phytopathogenic fungi isolated from the rhizosphere of the parchita culture showing an antagonistic activity with degree of inhibition of 1-3 and PIRC values of 51-78% in comparison with the commercial strain whose PICR values oscillated between 30-50.8%. The use of native strains of Trichoderma is seen with a high potential biocontralador in the cultivation of the parchita in conditions in vitro, nevertheless it is necessary its correct incorporation in field conditions in production systems and agro-ecological conditions.


Palabras clave


Antagonismo; Trichoderma; parchita; Passiflora flavicarpa; Anatogism; Trichoderma; parchita; Passiflora flavicarpa.

Texto completo:

PDF HTML

Referencias


Ahmed, M., 2011. Management of Fusarium wilt of tomato by soil amendment with Trichoderma koningii and a white sterile fungus. Indian J. Res. Anv. 5, 35–38.

Ajith, P.S. y Lakshmidevi, N., 2012. Zygosporium masonii, a new fungal antagonist against Colletotrichum capsici incitant of anthracnose on bell peppers. J. Agric. Technol. 8, 931–939.

Argumedo, R. Alarcón A., Ferrera, R. y Peña, J. 2009. El Género Fúngico Trichoderma y su Relación con Contaminantes Orgánicos e Inorgánicos Rev. Int. Contam. Ambient. 25 (4) 257-269

Bae, H., Roberts, D., Lim. H., Strem, Park, Soo., Choong, R., Melnick, R., y Bailey, B. 2011 Endophytic Trichoderma Isolates from Tropical En- vironments Delay Disease Onset and Induce Resistance Against Phytophthora capsici in Hot Pepper Using Multiple Mechanisms, Volume 24, Number 3 Pages 336-351 https://doi.org/10.1094/ MPMI-09-10-0221

Bae, S-J., Mohanta, T.K., Chung, J.Y., Ryu, M.,Park, G., Shim, S., Hong, S-B., Seo, H.,Bae, D-W., Bae, I., Kim, J-J., Bae, H. 2015. Tricho- derma metabolites as Biological Control Agents against Phytophthora Pathogens, doi: http://dx. doi.org/10.1016/j.biocontrol.10.005

Baghalian, K., Haghiry, A., Naghavi, M. R., Mohammadi, A. 2008. Effect of saline irrigation water on agronomical and phytochemical characters of chamomile (Matricaria recutita L.) Scientia Horti- culturae, Volume 116:4, 20 May, 437-441

Briones H. Guillermo F. 2014. Efecto de Trichoder- ma asperellum sobre la incidencia y severidad de Rhizoctonia solani y Gaeumannomyces graminis en la zona de Daule. Facultad de Ciencias Agra- rias Universidad de Guayaquil. Tesis de Grado. http://repositorio.ug.edu.ec/handle/redug/8162

Cabello, M., Aon, M., John Hopkins, Velázquez, S. 2003. Diversity, structure, and evolution of Fungal Communities in soils under different agricultural management practices. Boletín de la Sociedad Argentina de Botánica; URL: http://aims.fao.org/ serials/c_cb672e33

Campos, Melissa 2009. Efecto de la inoculación de sustratos con Trichoderma spp. sobre el crecimiento y producción de plantas de chile dulce (Capsicum annuum) bajo ambiente protegido. Proyecto de Graduación (Licenciatura en Ingeniería en Agronomía) Instituto Tecnológico de Costa Rica. http://hdl.handle.net/2238/289

Casimiro, A., Michel, M., Otero, L., Solano, P. 2009 Biocontrol in vitro con Trichoderma spp. de Fusarium subglutinans (Wollenweb. y Reinking) Nelson, Toussoun y Marasas y F. oxysporum Schle- cht., Agentes Causales de la “Escoba de Bruja” del Mango (Mangifera indica L.) Volumen 27, Nú- mero 1

Christopher, D.J., Raj, T.S., Rani, S.U., Udhayakumar, R., 2010. Role of defense enzymes activity in tomato as induced by Trichoderma virens against Fusarium wilt caused by Fusarium oxysporum f sp. lycopersici. J. Biopest. 3, 158–162.

Corporación de Desarrollo de la región zuliana. CORPOZULIA. Disponible en: http://www.corpo-zulia.gob.ve/archivos/SUCRE%202010-2011.pdf

Dal Bello, G., Mónaco, C., y Cháves, A. 1997. Efecto de los metabolitos volátiles de Trichoderma hamatum sobre el crecimiento de hongos fitopatógenos procedentes del suelo. Rev Iberoam Micol vol. 14: pg.131-134

Del Puerto R. Asela M; Suarez T., Palacio E., Daniel E. 2014, Efectos de los plaguicidas so- bre el ambiente y la salud. Rev Cubana Hig Epidemiol [online]. vol.52, n.3.

Delgado, S., Lozada B., Heidy Barrera Avendaño. Riqueza De Especies De Pasifloras (Passiflora- ceace). . 2008. Distribución Geográfica En Zonas Altas De Los Estados Andinos, Venezuela. GEO- ENSEÑANZA. Volumen 13 (1). enero - junio. p. 51-58 ISSN 1316-6077

Dennis, C., Webster, J. 1971 Antagonistic Proper- ties of Species-Groups of Trichoderma: II. Production of Volatile Antibiotics. Transactions of the British Mycological Society, 57, 363-369

Druzhinina, I. S., Kopchinskiy, A. G. and Kubicek, C. P. (2006). The first 100 Trichoderma species characterized by molecular data. Mycoscience 47: 55-64

Friedl, M., Druzhinina, I.S. 2012. Taxon-specific metagenomics of Trichoderma reveals a narrow community of opportunistic species that regulate each other’s development. Microbiol. 158, 69–83.

García R, Ricia R, Zambrano C, Gutiérrez L. 2006 Desarrollo de un fungicida biológico con base a una capa del hongo Trichoderma harzianum proveniente de la región Andina Venezolana. En memorias del taller Latinoamericano. Biocontrol con Trichoderma y otros antagonistas. Instituto de Investigaciones de Sanidad Vegetal. Ciudad de La Habana del 28-31.

García, M. 2002. Guía Técnica cultivo de Maracuyá Amarillo, centro nacional de tecnología agropecuaria y forestal. El Salvador www.intep.edu. co/Es/Usuarios/Institucional/file/.../Guia_Maracu- ya-INTEP-2014.pdf. 49p.

García, R., Urbina, F., González, F., Gutiérrez, Mora, R., Zerpa J., Infante, B. (2010). Estrategias de producción e incorporación de Trichoderma harzianum, cepa T12-andina, para el manejo de enfermedades fungosas de cultivos agrícolas en comunidades del estado de Mérida, Venezuela. AGRIS: International Information System for the Agricultural Science and Technology.

González Lucia, Acosta K, Escalera J, Atencio K, Molina G, Jiménez I. 2018. Comparación de la velocidad de crecimiento de inóculos comerciales y cepas nativas de Trichoderma como alternativas de control de hongos de suelos. REDIELUZ 1(8):113-122.

González S., J. C., Maruri G., J. M. y González A. 2005. Evaluación de diferentes concentracio- nes de Trichoderma contra Fusarium oxysporum agente causal de la pudrición de plántulas de papaya (Carica papaya L.) en Tuxpan, Veracruz, México. Revista UDO Agrícola 5 (1): 45-47.

Guédez, C. Cañizalez, L., Castillo, C., Olivar, R. 2012. Evaluación in vitro de aislamientos de Tri- choderma harzianum para el control de Rhizoctonia solani, Sclerotium rolfsii y Fusarium oxys- porum en plantas de tomate, Rev. Soc. Ven. Microbiol. vol.32 no.1

Guigón, César., Guerrero, V., Vargas, F., Carvajal, E., Ávila, G., Bravo L., Ruocco, M., Lanzuise, S., Woo, S. y Lorito, M. 2010. Identificación Mole- cular de Cepas Nativas de Trichoderma spp. su Tasa de Crecimiento in vitro y Antagonismo contra Hongos Fitopatógenos. Rev. mex. fitopatol vol.28.

Harman, G., Björkman T., Ondik K., Shoresh M. 2004. Changing Paradigms on The Mode of Action And Uses of Trichoderma Spp. For Biocon- trol. Department of Horticultural Sciences, Cornell University, Geneva, USA.

Harman, G.E., Howell, C.R., Viterbo, A., Chet, I., Lorito, M. 2004. Trichoderma species-opportunis- tic, avirulent plant symbionts. Nat. Rev. Microbiol. 2, 43–56p.

Herrera R., Iñiguez, R. 2014. Evaluación en labora- torio de la capacidad antagonista de Trichoderma spp., frente al crecimiento de lanosa (Rosellinia spp.), en el cultivo de papa (Solanum tuberosum L.) Tesis de Grado. Facultad De Industrias Agropecuarias Y Ciencias Ambientales. Universidad Politécnica Estatal Del Carchi. Ecuador. http:// repositorio.upec.edu.ec/handle/123456789/44

Jaklitsch, W.M., Voglmayr, H. 2015. Biodiversity of Trichoderma (Hypocreaceae) in Southern Europe and Macaronesia. Studies Mycol. 80, 1–87.

Joanna Łaźniewska, Violetta Katarzyna Macioszek, Andrzej Kiejstut Kononowicz. (2012) Plantfungus interface: The role of surface structures in plant resistance and susceptibility to pathogenic fungi Review article Physiological and Molecular Plant Pathology, Volume 78, April, Pages 24-30.

Júlia C., Gonzales; Guilherme, T.P; .Brancinia, Ga- briela: Rodrigues; Geraldo José Silva-Juniorb Luciano Bachmannc MarkWainwrightd Gilberto Ú.L.Bragaa 2017. Photodynamic inactivation of conidia of the fungus Colletotrichum abscissum on Citrus sinensis plants with methylene blue un- der solar radiation. Volume 176, November Pages 54-61.

Lagrouh., F. N. Dakka, Y. BakriThe. 2017. Antifungal activity of Moroccan plants and the mechanism of action of secondary metabolites from plants. Journal De Mycologie Médicale. http://dx.doi.or- g/10.1016/j.mycmed.2017.04.008.

Marko Vinceković, Marko Viskić, Slaven Jurić, Jasminka Giacometti, Anet Režek Jambrak. 2017. Innovative technologies for encapsulation of Mediterranean plants extracts. Trends in Food Science & Technology, Volume 69, pages 1-12.

Mastouri, F., Björkman, T., Harman, G.E. 2012. Trichoderma harzianum enhances antioxidant defense of tomato seedlings and resistance to water deficit. Mol. Plant-Microbe Interactions 25, 1264–1271.

Mehta, C.M. 2014. Compost: Its role, mechanism and impact on reducing soil-borne plant diseases. Waste Management http://dx.doi.org/10.1016/j. wasman.2013.11.012.

Michel-Aceves, A.C., Otero-Sánchez, M.A., Rebo- lledo-Domínguez, O., Lezama-Gutiérrez, R., Ari- za-Flores, R. y Barrios-Ayala, A. 2005. Producción y efecto antagónico de quitinasas y glucanasas por Trichoderma spp., en la inhibición de Fusa- rium subglutinans y Fusarium oxysporum in vitro. Revista Chapingo, Serie Horticultura 11:273-278.

Michel-Aceves, A.C., Reyes-De La Cruz, A., Ote- ro-Sánchez, M.A., Rebolledo-Domínguez, O. y Lezama-Gutiérrez, R. 2009. Potencial Antagónico de Trichoderma spp. sobre Fusarium oxysporum Schlechtend.:Fr. f. sp. lycopersici (Sacc.) Snyder y Hansen y Sclerotium rolfsii (Sacc.) in vitro e invernadero. Revista Mexicana de Fitopatología 23:284-291.

Montoro, Y. Moreno, R. Gomero, L. y Reyes, M. 2009. Características de uso de plaguicidas químicos y riesgos para la salud en agricultores de la sierra central del Perú. Rev. perú. med. exp. salud publica [online]., vol.26, n.4.

Muñoz, T y Jacinto D. 2017. Evaluación de Tri- choderma harzianum para el control de la pudrición blanca en el cultivo de Allium cepa. (cebolla de bulbo)”. Universidad Técnica de Am- bato. Ecuador. Tesis de Grado. Repositorio Digital. UTA. http://repositorio.uta.edu.ec/jspui/hand- le/123456789/24791.

Parizi, E., Elaminejad, A. 2012. Evaluation of the potential of Trichoderma viride in the control of fungal pathogens of Roselle (Hibiscus sabdariffa L.) in vitro. US National Library of Medicine Na- tional Institutes of Health.

Pelagio, R., Esparza, S., Garnica,A., López, J., y Herrera, A., 2017. Trichoderma-Induced Acidifica- tion Is an Early Trigger for Changes in Arabidopsis Root Growth and Determines Fungal Phytostimu- lation.. Front Plant Sci.; Vol 8: Pg 822.

Pérez N, Infante C, Rosquete C, Ramos A, Gonzá- lez C. 2010. Disminuyendo la relevancia de los plaguicidas. Alternativas a su uso. Agroecología [Internet]; 5:79-87. Disponible en:http://www.digi- tum.um.es/xmlui/bitstream/10201/29773/1/Dismi- nuyendo_la_relevancia_de_los_plaguicidas._Al- ternativas_a_su_uso.pdf.

Qualhato, T., Cardoso, F., Steindorff, A., Silva, R. 2013. Mycoparasitism studies of Trichoderma species against three phytopathogenic fungi: evaluation of antagonism and hydrolytic enzyme pro- duction. Volume 35, Issue 9, pg. 1461–1468.

Raspanti, E., Cacciola, O., Gotor L., Romero, I. 2009. Implications of cysteine metabolism in the heavy metal response in Trichoderma harzianum and in three Fusarium species. Volume 76, Pa- ges 48-54.

Reithner, B., Ibarra-Laclette, E., Mach, R.L., Herre- ra-Estrella, A. 2011. Identification of 627 myco- parasitism-related genes in Trichoderma atroviri- de. Appl. Environ. Microbiol. 77,628 4361–4370.

Rey, M., Delgado, J., Rincón, A., Limón, C. y Be- nítez , T. 2000 Mejora de cepas de Trichoderma para su empleo como biofungicidas, Rev Iberoam Micol vol.17: pg 31-S36.

Reyes, Y., Martínez, B. Infante, D. 2008. Evaluación de la Actividad Antagónica de Trece Aislamientos de Trichoderma Spp. Sobre Rhizoctonia Sp. Rev. Protección Veg. Vol. 23 No. 2 pg. 112-117.

Salinas, H. 2014. Guía Técnica para El Cultivo de “Maracuyá Amarillo” Instituto de Educación Técnica Profesional de Roldanillo Valle Colombia.

Seaby, D. 1996. Development of SCAR marker for Specific Detection of Trichoderma harzanium and Trichoderma viride differentiation of Trichoderma taxa associated with mushroom production. Plant Pathol 45: 905-912.

SENA., 2014 Manual Técnico del cultivo de Maracuyá bajo Buenas Prácticas Agrícolas, Gobernación de Antioquia Secretaria de Agricultura y De- sarrollo Rural.

Sharma, A. Mehta. C.M., Palni, H. Franke, C., (2017) Compost: Its role, mechanism and impact on reducing soil-borne plant diseases. Waste Management journal homepage: www.elsevier. com/locate/wasman.

Vallejo, M. 2014. Caracterización y clasificación de Trichoderma nativos aplicando diferentes medios de cultivo a nivel de laboratorio artesanal. Universidad Técnica de Ambato. Trabajo de grado académico de magister en agroecología y ambiente. 118p.

Vinale, F., Sivasithamparam, K., Ghisalberti, E. L., Marra, R., Woo, S. L., and Lorito, M. 2008. Tri- choderma–plant–pathogen interactions. Soil Biol. Biochem. 40:1–10.

Widmer, T. 2006. Screening Trichoderma species for biological control activity against Phytophthora ramorum in soil Control Volume 79, December Pages 43-48.

Widmer, T. 2014. Screening Trichoderma species for biological control activity against Phytophthora ramorum in soil. Biological Control journal home- page: www.elsevier.com/locate/ybcon

Woo, S., Ruocco, M., Vinale, F., Nigro M., Marra, R., Lombardi, N., Pascale, A., Lanzuise, S., Man- ganiello, G., Lorito, M. 2014. Trichoderma-based Products and their Widespread Use in Agriculture, ISSN: 1874-4370 ― Volume 8 Pg. 71–126.

Yucra S, Gasco M, Rubio J, Gonzales GF. 2008. Exposición ocupacional a plomo y pesticidas ór- ganofosforados: efecto sobre la salud reproducti- va masculina. Rev Perú Med Exp Salud Publica.; 25(4): 394-402.

Zachow C., Berg, C., M¨uller H., Mon. J., Berg G., 2015. Endemic plants harbour specific Trichoderma communities with an exceptional potential for biocontrol of phytopathogens. Journal of Biotechnology. 1-33pp.

Zavaleta M. E. 1999. Alternativas de manejo de las enfermedades de las plantas Terra Latinoame- ricana [en linea], Disponible en: ISSN.




Universidad del Zulia /Venezuela/ REDIELUZ/redieluz@viceacademico.luz.edu.ve /ISSN: 2244-7334

ReviCyHLUZ

Licencia de Creative Commons
Este obra está bajo una licencia de Creative Commons Reconocimiento-NoComercial-CompartirIgual 3.0 Unported.