Pseudomonas aeruginosa SENSIBLE A EXTRACTOS DE HOJAS Y SEMILLAS DE Moringa oleifera / Pseudomonas aeruginosa sensitive to extract of leaves and seeds of Moringa oleifera

• María Pérez Universidad del Zulia
• Lilibeth Cabrera Universidad del Zulia
• Gisela Colina Universidad del Zulia

Palabras clave: Sensibilidad antibacteriana, Pseudomonas aeruginosa, Moringa, oleifera Antibacterial sensitivity, Moringa oleifera.

Resumen

RESUMEN

Hoy, la multiresistencia bacteriana a los antibióticos de uso común, cada vez es más frecuente, por lo tanto se ha incrementado el interés por las propiedades antimicrobiana de las plantas, utilizándose como una alternativa terapéutica para el saneamiento de enfermedades infecciosas. El objetivo de este trabajo fue evaluar la sensibilidad antibacteriana in vitro de cepas de Pseudomonas aeruginosa de origen urinario y cepa ATCC 9027, frente a extractos acuosos de hojas y semillas de Moringa oleífera. Los extractos acuosos se obtuvieron por cocción a 50°C por 30 min, de 25g de hojas y de semilla trituradas en 50mL de agua destilada. Para demostrar el efecto inhibitorio se utilizó la técnica de difusión en placas de Agar Nutritivo, incubadas a 37°C por 24 horas. Los resultados obtenidos muestran mayor efecto en el extracto foliar mostró inhibición entre 8 y 9 mm, mientras que con semillas de 10 y 12 mm. La cepa ATCC 9027 resultó con halos de inhibición de 8 mm con extracto foliar y 10 mm con extracto de semillas. Se concluye que extractos acuosos 50 mg/mL, de hojas y semillas de M. oleifera puede considerarse una alternativa natural para el tratamiento de infecciones urinarias por Pseudomonas aeruginosa.

ABSTRACT

Nowadays, the bacterial multiresistance to the antibiotics of common use, is becoming more frequent, therefore the interest for the antimicrobial properties of the plants has increased, being used as a therapeutic alternative for the sanitation of infectious diseases. The aim of this work is to evaluate the in vitro antibacterial sensitivity of strains of Pseudomonas aeruginosa of urinary origin and strain ATCC 9027, against aqueous extracts of leaves and seeds of Moringa oleifera. The aqueous extracts were obtained by cooking at 50 °C for 30 min, 25 g of leaves and seed crushed in 50 mL of distilled water. To demonstrate the inhibitory effect, the diffusion technique was used in plates of nutritive agar, incubated at 37 °C for 24 hours. The obtained results show greater effect in the foliar extract showed inhibition between 8 and 9 mm, while with seeds of 10 and 12 mm. ATCC strain 9027 resulted in inhibition halos of 8 mm with leaf extract and 10 mm with seed extract. It is concluded that aqueous extracts 50 mg/ mL, leaves and seeds of M. oleifera can be considered a natural alternative for the treatment of urinary infections by Pseudomonas aeruginosa.

Citas

Abadie, R., Medina, R., Ruiz, L., Tresierra-Ayala, (2014). Actividad antibacteriana de los extractos vegetales frente a cepas intrahospitalarias, Iquitos-Perú. Rev ECIPerú 11 (1), 31-38.

Abdallah, E. (2016). Antibacterial properties of leaf extracts of Moringa oleifera Lam. growing in Sudan. J Adv Med Pharm Sci 5(1), 1-5.

Andreu, A., Alós, J., Gobernado, M., Marco, F., De la Rosa. M., García-Rodríguez, J. (2005). Etiología y sensibilidad a los antimicrobianos de los uropatógenos causantes de la infección urinaria baja adquirida en la comunidad. Estudio nacional multicéntrico. Enf. Infec. Microbio.l Clin. 23 (1), 4-9.

Anwar, F., Latif, S., Ashraf, M., Gilani, A.H. (2007). Moringa oleifera: una planta de alimentos con múltiples usos medicinales. Phytother Res 21,17-25.

Akinyeye, A., Solanke, E., Adebiyi, L. (2014). Phytochemical and antimicrobial evaluation of leaf and seed of Moringa oleifera extracts. Int J Res Med Health Sci 4(6), 1-10.

Alfonso A., Méndez R. (2018). Galleta de harina de Moringa (Oleífera lam) y Amaranto (Amaranthus caudatus). Tesis Profesional. Facultad de CIencias de la Nutricion y Alimentos. Universidad de Ciencias y Artes de Chiapas, 65 p.

Awadh Ali, N.A., Jülich, W.D., Kusnick, C., Lindequist, U. (2001). Screening of Yemeni medicinal plants for antibacterial and cytotoxic activities. J Ethnopharmacol 74(2), 173-179.

Barojas, L. (2016). Estudiantes y cuerpo académico de la Unidad de Investigación y Desarrollo en Alimentos (Unida) del Instituto Tecnológico de Veracruz emprendieron un proyecto encaminando a estudiar los compuestos bioactivos de la hoja de moringa (Moringa oleifera). Recuperado de: http://www. conacytprensa.mx/index.php/tecnologia/ biotecnologia/9384-cientificos-de-la-unida- investigan-propiedades-de-la-moringa.

Bauer, A., Kirby, A., Sherris, J., Turk, M. (1966). Antibiotic susceptibility testing by standardized single disk method. Am J Clin Pathol 45, 493-96.

Berthelot, P., Grattard, F., Mallaval, F.O., Ros, A., Lucht, F., Pozzetto, B. (2005). Épidémiologie des infections nosocomiales à Pseudomonas aeruginosa, Burkholderia cepacia et Stenotrophomonas maltophilia. Pathol Biol 53 (6), 341-348.

Caceres, A., Cebrera, O., Morales, O., Mollinedo, P., Mendia, P. (1991). Pharmacological properties of M. oleifera. 1: Preliminary screening for antimicrobial activity. J Ethnopharm 33 (3), 213-216.

Clemente, K. y Pérez, R. (2017). Evaluación de la Actividad Antimicrobiana de M. oleífera en bacterias patógenas. Tesis Profesional. Facultad de Ciencias de la Nutrición y Alimentos. Universidad de Ciencias y Artes de Chiapas, 65 p.

Cornejo-Juárez, P., Velásquez-Acosta, C., Sandoval, S., Gordillo, P., Volkow-Fernández, P. (2007). Patrones de resistencia bacteriana en urocultivos en un hospital oncológico. Salud Publ Mex 49 (5), 330-336.

Dalei, J., Madhav, V., Debasish, S., Rukimini, M., Ray, R. (2016). Review on nutritional and pharmacological potencie of Moringa oleifera. Eur J Pharm Med Res 3 (1), 150-55.

Doménech, G., Durango, A., Ros, G. (2017). Moringa oleifera: Revisión sobre aplicaciones y usos en alimentos. Archivos Latinoamericanos de Nutrición 67(2), 86-97.

Fahey, J.W. (2005) Moringa oleífera: A review of the medical evidence for its nutritional, therapeutic and prophylactic properties. Part 1. Trees Life J 1, 5-15.

Godino, M., Vázquez, T., Izquierdo, M., Pérez, C. (2013). Estudio de la incidencia de los factores ecológicos abióticos (temperatura y humedad) en la germinación y desarrollo de la Moringa oleifera Lam. Memorias del VI Congreso Forestal Español, 6CFE01-523. p.p. 2-13.

Grosvenor, P.W., Supriono, A., Gray, D.O. (1995). Medicinal plants from Riau Province, Sumatra, Indonesia. Part 2: antibacterial and antifungal activity. J Ethnopharmacol 45 (2), 97-111.

Ho, J., Tambyah, P.A., Paterson, D.L. (2010). Multiresistant Gram-negative infections: A global perspective. Curr Opin Infect Dis 23, 546–553.

Kumar, P.S., Mishra, D., Ghosh, G., Panda, Ch. (2010). Medicinal uses and pharmacological properties of Moringa oleifera. Int J Phytomedicine 2, 210-126.

Kumar, V., Kumar, A., Sharma, M., Singh, J. (2015). Herbs in dental health care. J Sci 5(8), 646- 652.

Kunin, C.M. (2001). Nosocomial urinary tract infections and the indwelling catheter: what is new and what is true? Chest 120(1), 10- 12.

Livermore, D.M. (2003).Bacterial resistance: Origins, epidemiology, and impact. Clin Infect Dis 15(36 S1), 11-23.

Livermore, D.M. (2002). Multiple mechanisms of antimicrobial resistance in Pseudomonas aeruginosa: Our worst nightmare? Clin Infect Dis 34 (5), 634-640.

Luján, D. (2014). Pseudomonas aeruginosa: un adversario peligroso. Acta Bioquim Clin Latinoam 48(4), 465-474.

MacFaddin, J. (2000). Biochemical test for identification of medical bacteria. Chaper 19. Third Edition. United State of America. Editorial Lawrence. McGraw, p. 254-272.

Márquez, R., Torres, C., Mercado, A. (2007). Actividad antifúngica del extracto total en etanol de la hojas frescas de Pedilanthus tithymaloides L Poit (ultimorrial). Sci Tech 13 (33), 155-159.

Martin, C., Martin, G., García, A., Fernández, T., Hernández, G., Puls, J. (2013). Potential applications of Moringa oleifera. Pastos Forraj 36(2), 150-158.

Martínez, L. y Calvo, J. (2010). The growing problem of antibiotic resistance in Clinically relevant Gram-negative bacteria: Current situation. Enferm Infecc Microbiol Clin 28 (Suppl 2), 25–31.

Mesaros, N., Nordmann, P., Plésiat, P., Roussel- Delvallez, M., Van Eldere, J., Glupczynski, Y., Van Laethem, Y., Jacobs, F., Lebecque, P., Malfroot, A., Tulkens, P.M., Van Bambeke,F. (2007). Pseudomonas aeruginosa: résistance et options thérapeutiques à l’aube du deuxième millénaire. Antibiotiques 9 (3), 189-198.

Mittal, R., Aggarwal, S., Sharma, S., Chhibber, S., Harjai, K. (2009). Urinary tract infections caused by Pseudomonas aeruginosa: A minireview. J Infect Public Health 2 (3), 101-111.

Oliveira, J.R., Silva, G.C., Costa, R., De Sousa, J.L., Fernandes, G.H., Fontales, A.A., Silva Dos F., R.H. (2011). In vitro antibacterial effect of aqueous and ethanolic Moringa leaf extracts. Assian Pacif J Trop Med XX, 201-204.

Oluduro, O., Aderiye, B., Conolly, J., Akintayo, E., Famurewa, O. (2010). Characterization and AntimicrobialActivityof4-(-D-Glucopyranosyl- 14--Lrhamnopyranosyloxy)-benzyl thiocarboxamide; a Novel Bioactive Compound from Moringa oleifera seed extract. Folia Microbiol 55 (5), 422-426.

Onsare, J.G., Kaur, H. Arora, D.S. (2013). Antimicrobial activity of Moringa oleifera from different locations against some human pathogens. Acad J Med Plants 1(5), 080-091.

Padla, E., Solis, L., Levida, R., Shan, C., Ragasa, C. (2012). Antimicrobial Isothiocyanate from the sedes of Moringa oleifera Lam. Naturforsch 67, 557-564.

Parekh, J. y Chanda, A. (2007). In vitro Antimicrobial Activity and Phytochemical Analysis of Some Indian Medicinal Plants. Turk J Biol 31, 53- 58.

Pérez, M., Cabrera, L., Colina, G. (2015). Actividad antibacteriana in vitro de extractos acuoso de Moringa oleifera sobre especies patógenas intrahospitalarias. Rev Redieluz 5(1 y 2), 141-145.

Rahman, M., Islam, M., Akhtar, Sh., Rhaman, M., Alam, M. (2009). Antibacterial activity of leaf juice and extracts of Moringa oleifera Lam. (2n=28) against some human pathogenic bacteria. CMU J Nat Sci 8(2), 219-227.

Salazar, P., Araque, M., Mosqueda, N. (2010). Análisis fenotípico y detección del gen blaVIM en cepas de Pseudomonas aeruginosa productoras de metalo-β-lactamasas aisladas en Mérida, Venezuela. Rev Fac Farm 52 (1), 12-17.

Saadabi, A. y Abu Zaid, I. (2011). An in vitro antimicrobial activity of Moringa oleifera L. seed extracts against different groups of microorganisms. Aust J Basic Appl Sci 5 (5), 129-134.

Sarasti, M. (2018). Evaluación de la actividad antimicrobiana mediante la extracción de la fracción activa presente en las hojas de la especie vegetal Moringa oleífera frente a microorganismos patógenos. Universidad Central del Ecuador. Facultad de Ciencias Químicas. Química Farmacéutica. 84p.

Schmidt, B., Ribnicky, D., Poulev, A., Logendra, S., Cefalu, W., Raskin, I. (2008). A natural history of botanical therapeutics. Metabolis 57(Suppl.1), 3-9.

Stohs, S.H. y Hartman, M.J. (2015). Review of safety and efficacy of Moringa oleifera. Phythother Res 29(6), 796-804.

Strateva, T. y Yordanov, D. (2009). Pseudomonas aeruginosa - a phenomenon of bacterial resistance. J Med Microbiol 58 (9), 1133-1148.

Suárez, M., Entenza, J.M., Doerries, C. (2003). Expression of a plant-derived peptide harboring water-cleaning and antimicrobial activities. Biotechnol Bioeng 81(1), 13-20.

Woodford, N., Turton, J.F., Livermore, D.M. (2011). Multiresistant Gram-negative bacteria: The role of high-risk clones in the dissemination of antibiotic resistance. FEMS Microbiol Rev 35, 736-755.

OMS (1998). World Health Organization. Emerging and other communicable diseases: Antimicrobial resistance. Geneva.