Leptospirosis genital incidental en machos Bubalus bubalis del estado Portuguesa, Venezuela

  • Rosaura Pérez-Gil Centro Diagnóstico Veterinario Rosaura Pérez-Gil. Araure, Portuguesa, Venezuela
  • Sergio Rivera-Pirela Universidad del Zulia, Facultad de Ciencias Veterinarias. Maracaibo, Zulia, Venezuela
Palabras clave: Leptospira hebdomadis, MAT, anomalías espermáticas, histopatología, bacteriología, Bubalus bubalis

Resumen

La leptospirosis constituye una importante causa de infertilidad en bóvidos. En Bubalus bubalis, Leptospira spp. infecta el tejido renal, así como los órganos sexuales, por lo que puede excretarse, tanto en orina como en semen. Solo un número limitado de estudios en todo el mundo han investigado la seroprevalencia de la enfermedad en machos bovinos y los riesgos reproductivos relacionados con la eliminación del patógeno en el semen. Se reportan aquí los resultados de la evaluación serológica, microbiológica, seminal e histopatológica de machos bufalinos adultos del municipio Esteller, estado Portuguesa, Venezuela, infectados naturalmente con Leptospira spp. Se evaluaron 17 búfalos mestizos Murrah de 40 meses de edad, previo al beneficio, con 500 kilos de peso promedio, no vacunados, a los cuales se les tomaron muestra de suero sanguíneo, orina, semen y se midió circunferencia escrotal junto a otros parámetros reproductivos. Exclusivamente 15 animales mostraron títulos entre 50 y 200 en la MAT, exclusivamente para L. hebdomadis. Los 2 animales negativos a MAT resultaron positivos en cultivo bacteriológico de orina o semen a Leptospira spp. De 6 animales beneficiados, MAT y bacteriológicamente positivos a leptospira en semen y orina, se extrajeron riñones, testículos y epidídimos para examen histopatológico. De epidídimos y riñónes se aislaron Leptospira spp., no así de testículos. Sin embargo, el diagnóstico histopatológico en testículo y epidídimo indicó degeneración de células seminíferas compatible con infección bacteriana. El riñón presentó nefritis intersticial crónica. Hubo disminución en el promedio de la circunferencia escrotal, baja intención de monta, baja concentración espermática, ausencia de ondas, pocos espermatozoides móviles, baja motilidad espermática y más de 30 % de mortalidad espermática de las muestras de semen evaluadas, indicando baja calidad del eyaculado. Las anomalías seminales mayores y menores superaron las escalas recomendadas para la especie. Se reportan aquí resultados exclusivos de búfalos machos infectados individualmente con L. hebdomadis, excretada por orina y semen, responsable de afectar el tracto reproductivo de manera incidental, ocasionando daños espermáticos, del epidídimo y daño renal, en una explotación mixta arrocera, con presencia de roedores, potenciales transmisores de la leptospirosis.

Descargas

La descarga de datos todavía no está disponible.

Citas

ADUGNA, S. A review of leptospirosis. Europ. J. Appl. Sci. 8: 347–355. 2016.

BLOM, J.P.; GUMPERZ, J.J. Code-switching in Norway. Sociolinguistics: The Sociolinguistics of Multilingualism. 4: 42. 2009.

CARVALHO, O.S.; GONZAGA, L.N.R.; ALBUQUERQUE, A.S.; BEZERRA, D.C.; CHAVES, N.P. Occurrence of Brucella abortus, Leptospira interrogans and bovine herpesvirus type 1 in buffalo (Bubalus bubalis) herd under extensive breeding system. Afr. J. Microbiol. Res. 9: 598–603. 2015.

CICERONI, L.; BARTOLONI, A.; PINTO, A.; GUGLIELMETTI, P.; GAMBOA-BARAHONA, H.; ROSELLI, M.; PARADISI, F. Prevalencia de infecciones leptospirosicas en los habitantes de la provincia cordillera, Bolivia. Transact. the Royal Soc. Trop. Med. Hyg. 19: 385–386. 1995.

CONSTABLE, P.D.; HINCHLIF, K.W.; DONE, S.; GRUENBERG, W. Diseases of Urinary system Diseases of Urinary system. Veterinary Medicine: a textbook of the diseases of cattle, horses, sheep, pigs, and goats. 11th. Ed. Saunders, Philadelphia. Pp 1095–1155. 2016.

DENIPITIYA, D.T.H.; CHANDRASEKHARAN, N.V.; ABEYEWICKREME, W.; HARTSKEERL, R.A.; HAPUGODA, M.D. Identification of cattle, buffaloes and rodents as reservoir animals of Leptospira in the District of Gampaha, Sri Lanka. BMC Res. Notes. 10: 1–5. 2017.

DIVERS, T.J. How is leptospirosis spread?. Leptospirosis in Ruminants. The Merck Veterinary Manual. 11th. Ed. Merck & CO., Inc., Kenilworth. Pp 646–655. 2016.

ELLIS, W.A.; CASSELS, J.A.; DOYLE, J. Genital leptospirosis in bulls. Vet. Rec. 118: 333. 1986.

GONZÁLEZ-TAFALLA, F.; RIVERA-PIRELA, S. Caracterización de la leptospirosis bovina en Venezuela. Revisión breve sobre la enfermedad. Rev. REDVET. 16(2): 1–22. 2015.

GUEDES, I.B.; DE SOUZA, G.O.; DE PAULA-CASTRO, J.F.; DE SOUZA – FILHO, A.F.; CAVALINI, M.B.; TANIWAKI, S.A.; MAIA, P.A.L.; PEREIRA, I.C.; HEINEMANN, M.B. Identification of pathogenic Leptospira species in the urogenital tract of water buffaloes (Bubalus bubalis) from the Amazon River Delta region, Brazil. Frontiers Vet. Sci. 7: e269. 2020.

HAJIKOLAEI, M.R.; NIKVAND, A.A.; GHADRDANMASHHADI, A.R.; GHORBANPOOR, M.; MOHAMMADIAN, B.; ABDOLLAHPOUR, G. Existence of Leptospira interrogans in kidney and shedding from urine and relationship with histopathological and serological findings in water buffaloes (Bubalus bubalis). Rev. Méd. Vet. 167: 269–273. 2016.

HEINEMANN, M.B.; GARCIA, J.F.; NUNES, C.M.; GREGORI, F; HIGA, Z.M.; VASCONCELLOS, S.A.; RICHTZENHAIN, L.J. Detection and differentiation of Leptospira spp. serovars in bovine semen by polymerase chain reaction and restriction fragment length polymorphism. Vet. Microbiol. 73: 261–267. 2000.

KONRAD, J.L.; CAMPERO, L.M.; CASPE, G.S.; BRIHUEGA, B.; DRAGHI, G.; MOORE, P.D.; CRUDELI, G.A.; VENTURINI, M.C.; CAMPERO, C.M. Detection of antibodies against Brucella abortus, Leptospira spp., and Apicomplexa protozoa in water buffaloes in the Northeast of Argentina. Trop. Anim. Health. Prod. 45: 1751–1756. 2013.

MARTINS, G.; LILENBAUM, W. Control of bovine leptospirosis: aspects for consideration in a tropical environment. Res. Vet. Sci. 112: 156–160. 2017.

OHASHI O.M.; SANTOS, S.S.D.; MIRANDA, M.S.; CORDEIRO, M.S.; COSTA, N.N.; SILVA, T.V.G. Morfologia do sistema genital, distúrbio reprodutivo e manejo do macho bubalino (Bubalus bubalis). Rev. Bras. Reprod. Anim. Belo Horizonte. 35(2): 88–94. 2011.

OFICINA INTERNACIONAL DE E`PIZOOTIAS (OIE). Manual Terrestre de la OIE. Cap. 3.1.12. Leptospirosis. Pp 1-13. 2021. En línea: https://bit.ly/41b2wHI. 05/11/2022.

PAUL, P.S. Applications of nucleic acid probes in veterinary infectious diseases. Vet. Microbiol. 2: 409–417. 1990.

PERUMAL, P.; CHAMUAH, J.K.; SRIVASTAVA, N.; VUPRU, K.; SRIVASTAVA, S.K. Infectious causes of infertility in buffalo bull (Bubalus bubalis). Inter. J. Bio-Res. Str. Man. 4: 84-90. 2013.

PRAJAPATI, A.; KUSHWAHA, A.; CHAYANIKA, D.; SUBHASHREE, N.; VARSHA, P.; MARCIA, A.; LAHARI, L.; SHIVASHANKAR, P.; PATEL, N. A review on bovine leptospirosis with special reference to seroprevalence in India. Int. J. Curr. Microbiol. Appl. Sci. 7: 1813–1820. 2018.

RAMÍREZ, M.; RIVERA, S. Prevalencia de la Leptospirosis bovina en relación a los factores de riesgo. Rev. Científ. FCV-LUZ. IX (5): 418–426. 1999.

ROMERO-SALAS, D.; ALVARADO-ESQUIVEL, C.; DOMÍNGUEZ-AGUILAR, G.; CRUZ-ROMERO, A.; IBARRA-PRIEGO, N.; BARRIENTOS-SALCEDO, C.; AGUILAR-DOMÍNGUEZ, M.; CANSECO-SEDANO, R.; ESPÍN-ITURBE, L.T.; SÁNCHEZ-ANGUIANO, L.F.; HERNÁNDEZ-TINOCO, J.; PÉREZ DE L, A.A. Seroepidemiology of infection with Neospora caninum, leptospira, and bovine herpesvirus type 1 in water buffaloes (Bubalus bubalis) in Veracruz, Mexico. Europ. J. Microbiol. Immunol. 7(4): 278–283. 2017.

SANDERSON, M.W.; GNAD, D.P. Biosecurity for reproductive diseases. Vet. Clin. North Am. Food Anim. Pract. 18 (1): 79–98. 2002.

SATISH, S.K.; NIRWAN, S.S.; CHAHAR, N. Current status of abortion in buffalo (Bubalus bubalis) associated with infectious agents: A short communication. J. Entomol. Zool. Stud. 7(1): 1328–1334. 2019.

SUEPAUL, S.M.; CARRINGTON, C.V.; CAMPBELL, M.; BORDE, G.; ADESIYUN, A.A. Seroepidemiology of leptospires in livestock in Trinidad. Trop. Anim. Health Prod. 43: 367–375. 2011.

SUWANCHAROEN, D.; CHAISAKDANUGULL, Y.; THANAPONGTHARM, W.; YOSHIDA, S. Serological survey of leptospirosis in livestock in Thailand. Epidemiol. Infect. 141: 2269-–2277. 2013.

THIERMANN, A.B. Leptospirosis: current developments and trends. J. Am. Vet. Med. Assoc. 184(6): 722–725. 1984.

VALE, W.G. Sperm cryopreservation. Third Course on Biotechnology of Reproduction in Buffaloes, Caserta, Italy. En: Bubalus bubalis. J. Buffalo Sci. Tech. Suppl. 4: 129–140. 1997.

VALE, W.G. Collection processing and deep freezing of buffalo semen. Buffalo J. Pp 65–81. 1994.

VALE, W.G.; NAHÚM, B. DE S.; SILVA, A.O.A.; SOUSA, J.S.; SOUZA, H.E.M.; OHASHI, O.M.; RIBEIRO, H.F.L. Inseminação artificial em búfalos com sêmen congelado em diluente a base de água de côco (Cocus nucifera). Rev. Brasileira Reprod. Anim. 23(3): 354–356. 1999.

VALE-WILLIAM, G. Avances biotecnológicos en reproducción de búfalos Tecnol. Marcha. 24(5): 89–104. 2011.

ZARANTONELLI, L.; SUANES, A.; MENY, P.; BURONI, F.; NIEVES, C.; SALABERRY, X.; BRIANO, C.; ASHFELD, N.; DA SILVA, S.; DUTRA, F.; EASTON, C.; FRAGA, M.; GIANNITTI, F.; HAMOND, C.; MACÍAS-RIOSECO, M.; MENÉNDEZ, C.; MORTOLA, A.; PICARDEAU, M.; QUINTERO, J.; RÍOS, C.; RODRÍGUEZ, V.; ROMERO, A.; VARELA, G.; RIVERO, R.; SCHELOTTO, F.; RIET-CORREA, F.; BUSCHIAZZO, A. Isolation of pathogenic Leptospira strains from naturally infected cattle in Uruguay reveals high serovar diversity, and uncovers a relevant risk for human leptospirosis. PLoS. Negl. Trop. Dis. 12: e0006694. 2018.

Publicado
2023-02-21
Cómo citar
1.
Pérez-Gil R, Rivera-Pirela S. Leptospirosis genital incidental en machos Bubalus bubalis del estado Portuguesa, Venezuela. Rev. Cient. FCV-LUZ [Internet]. 21 de febrero de 2023 [citado 22 de diciembre de 2024];33(1):1-. Disponible en: https://produccioncientificaluz.org/index.php/cientifica/article/view/39774
Sección
Medicina Veterinaria