Genotipos de resistencia antimicrobiana y su expresión fenotípica en cepas de Staphylococcus aureus.

Maribel Castellano González, Armindo Perozo Mena, Ana María Parra, Messaria Ginestre Pérez, Gresleida Rincón Villalobos

Resumen


Se determinó la resistencia antimicrobiana mediante métodos fenotípicos y genotípicos a 106 cepas de S. aureus aisladas de pacientes atendidos en el Centro de Referencia Bacteriológica del Servicio Autónomo Hospital Universitario de Maracaibo durante el primer trimestre del 2009. El cultivo, aislamiento e identificación se realizó siguiendo la metodología convencional. Fenotípicamente, 103 cepas (97,17%) resultaron resistentes a penicilina G; 54 (50,94%) a meticilina; 43,39% a eritromicina (46) y 34,91% (37) a gentamicina. Además, 13 (12,26%) se mostraron intermedias a eritromicina. Genotípicamente, 90 cepas (84,91%) portaban el gen blaZ mediante la reacción en cadena de la polimerasa (PCR); 53 (50%) acarreaban el gen mecA; sólo 10 (9,43%) albergaban el gen aac(6”™)/aph(2”™”™); el gen ermA se detectó en 41 aislados (38,68%) y msrA en 17 (16,04%). Los resultados discordantes fueron: (1) Una cepa mecA-negativa; pero resistente a meticilina, la cual resultó blaZ-positiva e hiperproductora de β-lactamasas; (2) Una cepa resistente a eritromicina y negativa para los genes ermA, B, C y msr y; (3) veintiséis cepas gentamicina-resistentes; pero negativas para aac(6”™) / aph(2”™”™). Los fenotipos y genotipos de resistencia antimicrobiana están relacionados; sin embargo, existe una marcada variabilidad en los determinantes genéticos de la resistencia lo que repercute, indudablemente en su expresión fenotípica. Para oxacilina y en menor proporción para eritromicina, existe una buena concordancia entre los fenotipos y genotipos de resistencia encontrados; observándose la mayor discrepancia en los aminoglicósidos, y penicilina G.


Palabras clave


S. aureus; resistencia; fenotipos; genotipos

Texto completo:

PDF

Referencias


(1) Chambers H. The Changing Epidemiology of Staphylococcus aureus? Emerg Infect Dis 2001; 7(2):178-82.

(2) Fluit AC, Visser M, Schmitz F. Molecular Detection of Antimicrobial Resistance. Clin Microbiol Rev 2001; 14(4):836-71.

(3) Martineau F, Picard F, Lansac N, Menard C, Roy P, Ouellette M. et al. Correlation between the Resistance Genotype Determined by Multiplex PCR Assays and the Antibiotic Susceptibility Patterns of Staphylococcus aureus and Staphylococcus epidermidis. Antimicrob Agents Chemother 2000 Feb 1; 44(2):231-8.

(4) Schmitz F, Fluit A, Gondolf, Beyrau R, Lindenlauf E, Verhoef J. et al. The prevalence of aminoglycoside resistance and corresponding resistance genes in clinical isolates of staphylococci from 19 European hospitals. J Antimicrob Chemother 1999; 43(2):253-9.

(5) Ardic N, Sareyyupoglu B, Ozyurt M, Haznedaroglu T, Ilga U. Investigation of aminoglycoside modifying enzyme genes in methicillin-resistant staphylococci. Microbiol Res 2006; 161(1):49-54.

(6) Choi S, Kim S, Kim H, Lee D, Choi J, Yoo J. et al. Multiplex PCR for the detection of genes encoding aminoglycoside modifying enzymes and methicillin resistance among Staphylococcus species. J Korean Med Sci 2003; 18(5):631-6.

(7) Ida T, Okamoto R, Shimauchi C, Okubo T, Kuga A, Inoue M. Identification of

Aminoglycoside-Modifying Enzymes by Susceptibility Testing: Epidemiology of Methicillin-Resistant Staphylococcus aureus in Japan. J Clin Microbiol 2001; 39(9):3115-21.

(8) Lewis J, Jorgensen J. Inducible clindamycin resistance in Staphylococci: should clinicians and microbiologists be concerned? Clin Infect Dis 2005; 40(2):280-5.

(9) Merino-Diaz L, Cantos de la CA, Torres-Sanchez M, Heznar-Martin J. Detection of inducible resistance to clindamycin in cutaneous isolates of Staphylococcus spp. by

phenotypic and genotypic methods. Enferm Infecc Microbiol Clin 2007; 25(2):77-81.

(10) Steward C, Raney P, Morrell A, Williams P, McDougal L, Jevitt L. et al. Testing for Induction of Clindamycin Resistance in Erythromycin-Resistant Isolates of Staphylococcus aureus. J Clin Microbiol 2005; 43(4):1716-21.

(11) Daurel C, Huet C, Dhalluin A, Bes M, Etienne J, Leclercq R. Differences in potential for selection of clindamycin-resistant mutants between inducible erm(A) and erm(C) Staphylococcus aureus genes. J Clin Microbiol 2008; 46(2):546-50.

(12) Sekiguchi J, Fujino T, Saruta K, Konosaki H, Nishimura H, Kawana A. et al. Prevalence of erythromycin-, tetracycline-, and aminoglycoside-resistance genes in methicillinresistant Staphylococcus aureus in hospitals in Tokyo and Kumamo. Jpn J Infect Dis 2004; 57:74-7.

(13) Becker K, vonEiff C. Staphylococcus, Micrococcus and other catalase-positive cocci. In: Versalovic J Carrol K, Funke G, Jorgensen J, Landry M, Warnock D, editors. Manual of Clinical Microbiology. Tenth ed. Washington, DC. ASM Press; 2011.

(14) CLSI (Clinical Laboratory Standardization Institute). Performance standards for antimicrobial susceptibility testing. Nineteenth Informational Supplement M100-S19. CLSI, editor. 19th[29], 1-156. 2009. USA.

(15) Martineau F, Picard FJ, Roy PH, Ouellette M, Bergeron MG. Species-specific and

ubiquitous-DNA-based assays for rapid identification of Staphylococcus aureus. J Clin Microbiol 1998; 36(3):618-23.

(16) Strommenger B, Kettlitz C, Werner G, Witte W. Multiplex PCR Assay for Simultaneous Detection of Nine Clinically Relevant Antibiotic Resistance Genes in Staphylococcus aureus. J Clin Microbiol 2003; 41(9):4089-94.

(17) Felten A, Grandry B, Lagrange PH, Casin I. Evaluation of Three Techniques for Detection of Low-Level Methicillin-Resistant Staphylococcus aureus (MRSA): a Disk Diffusion Method with Cefoxitin and Moxalactam, the Vitek 2 System, and the MRSA Screen Latex Agglutination Test. J Clin Microbiol 2002; 40(8):2766-71.

(18) Yokoyama T, Honda J, Kawayama T, Kajimura K, Oizumi K. Increased incidence of beta-lactamase-plasmid negative, high level methicillin-resistant Staphylococcus aureus (MRSA). Kurume Med J 1996; 43(3):199-206.

(19) Kaase M, Lenga S, Friedrich S, Szabados F, Sakinc T, Kleine B, et al. Comparison of phenotypic methods for penicillinase detection in Staphylococcus aureus. Clin Microbiol Infect 2008; 14(6):614-6.

(20) Lina G, Quaglia A, Reverdy ME, Leclercq R, Vandenesch F, Etienne J. Distribution of Genes Encoding Resistance to Macrolides, Lincosamides, and Streptogramins among Staphylococci. Antimicrob Agents Chemother 1999; 43(5):1062-6.

(21) Hamilton-Miller J, Shah S. Patterns of phenotypic resistance to the macrolidelincosamide- ketolide-streptogramin group of antibiotics in staphylococci. J Antimicrob Chemother 2000; 46(6):941-9.

(22) Ghebremedhin B, Olugbosi M, Raji A, Layer F, Bakare R, Konig B, et al. Emergence of a Community-Associated Methicillin-Resistant Staphylococcus aureus Strain with a Unique Resistance Profile in Southwest Nigeria. J Clin Microbiol 2009; 47(9):2975-80.


Enlaces refback

  • No hay ningún enlace refback.




Copyright (c) 2012 Maribel Castellano González, Armindo Perozo Mena, Ana María Parra, Messaria Ginestre Pérez, Gresleida Rincón Villalobos

Licencia de Creative Commons
Este obra está bajo una licencia de Creative Commons Reconocimiento-NoComercial-CompartirIgual 4.0 Internacional.

Departamento de Enfermedades infecciosas y Tropicales. Facultad de Medicina. Universidad del Zulia / Maracaibo / Venezuela / Kasmera / e-mail: revistakasmera@gmail.com  / P-ISSN 0075-5222 / E-ISSN 2477-9628

 

Licencia de Creative Commons
Este obra en Acceso Abierto (Open Access) está amparada bajo una licencia Creative Commons Reconocimiento-NoComercial-CompartirIgual 4.0 Internacional.

 Biblioteca Digital Revicyhluz de Revistas Científicas y Humanísticas pertenecientes al Sistema de Servicios Bibliotecarios y de Información, Serbiluz, de la Universidad del Zulia, LUZ; Maracaibo, Venezuela