Efecto de la hormona Folículo-estimulante administrada vía epidural, sobre la respuesta ovárica y el perfil hormonal en vacas Holstein

• María Gabriela Farías-Delgado Universidad Técnica de Manabí, Facultad de Ciencias Veterinarias. Manabí, Ecuador - Universidad Laica Eloy Alfaro de Manabí, Carrera Agropecuaria, Extensión Chone. Chone, Ecuador
• Juan José Zambrano Universidad Técnica de Manabí, Facultad de Ciencias Veterinarias. Manabí, Ecuador
• Andrés Santiago Jácome-Aucay Universidad de Cuenca, Facultad de Ciencias Agropecuarias, Carrera de Medicina Veterinaria. Cuenca, Ecuador
• Jorge Bolívar Dután-Sanango Universidad de Cuenca, Facultad de Ciencias Agropecuarias, Carrera de Medicina Veterinaria. Cuenca, Ecuador
• Gabriela Sofía Garay-Peña Universidad de Cuenca, Facultad de Ciencias Agropecuarias, Carrera de Medicina Veterinaria. Cuenca, Ecuador
• Luis Eduardo Ayala-Guanga Universidad de Cuenca, Facultad de Ciencias Agropecuarias, Carrera de Medicina Veterinaria. Cuenca, Ecuador

DOI: https://doi.org/10.52973/rcfcv-e33253

Palabras clave: Hormona folículo-estimulante, epidural, vacas Holstein, superovulación

Resumen

El estudio se realizó en vacas Holstein mestizas, criadas en el trópico alto del Ecuador. Se determinó el efecto de la administración de hormona Folículo-estimulante (FSH), vía epidural en dosis única, sobre la respuesta ovárica, el número de estructuras y embriones transferibles colectados; así como, el perfil hormonal. Se probaron dos tratamientos (T): T1 (n=14; convencional) recibieron 300 mg de FSH repartidas en 8 dosis decrecientes vía intramuscular (IM), los días (d) 4; 5; 6 y 7 del protocolo en la mañana y en la tarde, en T2 (n=14; epidural) se administró 200 mg de FSH en una sola dosis vía epidural en el d 4. En una segunda instancia se determinó la concentración de FSH a las 0; 2; 4; 12 ,24; 26; 28; 36; 48; 50; 52; 60; 72; 74; 76 y 84 h del protocolo de superovulación (SOV). El número de folículos antrales (FA) que respondieron a la aplicación de la FSH fue similar (P>0,05) entre protocolos (T1=17,9 ± 1,55 folículos; T2=14,3 ± 1,69 folículos); así como también lo fue el tamaño de éstos. Sin embargo, los animales de T2 (5,8 ± 1,83 CLs: cuerpos lúteos) presentaron 2,4 veces menos CLs que los observados en T1 (13,9 ± 1,57 CLs; P<0,05). Se obtuvo mayor cantidad de estructuras en T1 (9,4 ± 1,05) que en T2 (4,5 ± 1,29) e igual sucedió con los embriones transferibles. La FSH alcanzó los valores más altos a las 4 h y mantuvo concentraciones similares durante las primeras 50 h. Luego la concentración en T2 disminuyó a valores basales inferiores a los observados en T1. Se concluye que 200 mg de FSH aplicados por vía epidural provocaron una superestimulación similar al protocolo convencional; sin embargo, el número de ovulaciones y de embriones transferibles obtenidos fueron dos veces menos que los observados en T1.

Citas

Hasler JF. Forty years of embryo transfer in cattle: A review focusing on the journal Theriogenology, the growth of the industry in North America, and personal reminisces. Theriogenol. 2014; 81(1):152–169.

Bautista VM, Jiménez SP, Meza CD, Ramos TI, Toledo JR. FSH in bovine superovulation. Rev. Bionatura. 2019; 4(1):812–816.

Becaluba F. Factores que afectan la superovulación en bovinos. Sitio Argentino Prod. Anim. [Internet] 2007 [Consultado 3 Mar 2023]; 18 p. Disponible en: https://bit.ly/3NlPPTZ.

Bó G, Mapletoft R. Historical perspectives and recent research on superovulation in cattle. Theriogenol. 2014; 81(1):38–48.

Kimura K. Superovulation with a single administration of FSH in aluminum hydroxide gel: a novel superovulation method for cattle. J. Reprod. Dev. 2016; 62:423–429.

Ratsiri T, Ratchamak R, Chumchai R, Boonkum W, Vongpralub T, Chankitisakul V. A novel route of follicle-stimulating hormone administration with a split-single ischiorectal fossa in thai-holstein crossbred superovulation programs under heat stress conditions. Anim. Sci. J. 2021; 92(1):e13574.

Sakaguchi K, Ideta A, Yanagawa Y, Nagano M, Katagiri S, Konishi M. Effect of a single epidural administration of follicle-stimulating hormone via caudal vertebrae on superstimulation for in vivo and in vitro embryo production in Japanese black cows. J. Reprod. Dev. 2018; 64(5):451–455.

Chumchai R, Ratsiri T, Ratchamak R, Vongpralub T, Boonkum W, Chankitisakul V. Ovarian responses and FSH profiles at superovulation with a single epidural administration of gonadotropin in the Thai-Holstein crossbreed. Anim. Reprod. 2021; 18(3):e20210053.

Kanitz W, Becker F, Schneider F, Kanitz E, Leiding C, Nohner HP, Pöhland R. Superovulation in cattle: practical aspects of gonadotropin treatment and insemination. Reprod. Nutr. Dev. 2002; 42(6): 587-99.

Hoedemaker M, Prange D, Gundelach Y. Body condition change ante- and postpartum, health and reproductive performance in German Holstein Cows. Reprod. Dom. Anim. 2009; 44(2):167–173.

Naranjo F, Montiel F, Canseco R, Ahuja-Aguirre C. Embryo production after superovulation of bovine donors with a reduced number of FSH applications and an increased eCG dose. Theriogenol. 2020; 141:168–172.

Organización Mundial de Sanidad Animal (OIE). Código sanitario para los animales terrestres. 19na. ed. 2015; 357 p.

Ayala L, Pesantez JL, Rodas ER, Dután J, Calle G, Murillo Y, Vázquez J, Nieto P, Ortega V, Samaniego J. Dinámica folicular de vaquillas Criollas al pastoreo en el altiplano ecuatoriano. Arch. Zoot. 2019; 68(262):184–190.

Stringfellow DA, Givens MD. International Embryo Transfer Society (IETS). Embryo classification. En: Manual of the International embryo transfer society: A procedural guide and general Information for the use of embryo transfer technology emphasizing sanitary precautions. 4th. ed. 2010; p 25-38.

Ayala L, Astiz S, Dutan J, Samaniego J, López R, Perea F, Hernández-Fonseca H, Pesántez JL. Relationship between the concentration of anti-Müllerian hormone and antral follicle count in pasture-managed Holstein cows in the high tropics. J. Dairy Res. 2022; 89(1):60–64.

Mossa F, Walsh SW, Butler ST, Berry DP, Carter F, Lonergan P, Smith GW, Ireland JJ, Evans ACO. Low numbers of ovarian follicles ≥ 3mm in diameter are associated with low fertility in dairy cows. J. Dairy Sci. 2012; 95(5):2355–2361.

Sartori R, Gimenes L, Monteiro P, Melo M, Baruselli PS, Bastos M. Metabolic and endocrine differences between Bos taurus and Bos indicus females that impact the interaction of nutrition with reproduction. Theriogenol. 2016; 86(1): 32–40.

Lee I, Yamagishi N, Oboshi K, Yamada H. Effect of epidural fat on xylazine-induced dorsolumbar epidural analgesia in cattle. Vet. J. 2003; 165(3):330–332.

Bó G, Hockley DK, Nasser LF, Mapletoft RJ. Superovulatory response to a single subcutaneous ejection of Folltropin-V in beef cattle. Theriogenol. 1994; 42:963–975.

López-Gatius F, Llobera-Balcells M, Palacín-Chauri RJ, Garcia-Ispierto I, Hunter RHF. Follicular size threshold for ovulation reassessed. Insights from multiple ovulating dairy cows. Anim. 2022; 12(9):1–9.

Mogollón-Waltero EM, Burla-Dias JA. Superovulación de hembras bovinas: Alternativas para reducir el número de inyecciones de FSH. Spei Domus. 2013; 9(18):37–47.

Chasombat J, Nagai T, Parnpai R, Vongpralub T. Ovarian follicular dynamics, ovarian follicular growth, oocyte yield, in vitro embryo production and repeated oocyte pick up in thai native heifers undergoing superstimulation. Asian-Aust. J. Anim. Sci. 2013; 26(4):488–500.

Bó G, Mapletoft RJ. Superstimulation of ovarian follicles in cattle: Gonadotropin treatment protocols and FSH profiles. Theriogenol. 2020; 150:353–359.

Bernards CM. Understanding the physiology and pharmacology of epidural and intrathecal opioids. Best. Pract. Res. Clin. Anaesthesiol. 2002; 16(4):489–505.