Detección molecular de patógenos transmitidos por garrapatas en ovarios y fetos momificados de tres vacas con historia de problemas reproductivos en el norte de Veracruz, México

• Miguel Angel Lammoglia-Villagómez Universidad Veracruzana, Facultad de Ciencias Biológicas y Agropecuarias región Tuxpan. Tuxpan de Rodríguez Cano, Veracruz, México
• Amalia Cabrera-Núñez Universidad Veracruzana, Facultad de Ciencias Biológicas y Agropecuarias región Tuxpan. Tuxpan de Rodríguez Cano, Veracruz, México
• Rebeca Rojas-Ronquillo Universidad Veracruzana, Facultad de Ciencias Biológicas y Agropecuarias región Tuxpan. Tuxpan de Rodríguez Cano, Veracruz, México https://orcid.org/
• Jorge Luis Chagoya-Fuentes Universidad Veracruzana, Facultad de Ciencias Biológicas y Agropecuarias región Tuxpan. Tuxpan de Rodríguez Cano, Veracruz, México
• Ingeborg Becker Universidad Nacional Autónoma de México, Facultad de Medicina, Unidad de Medicina Experimental, Centro de Medicina Tropical. Ciudad de México, México
• Sokani Sánchez-Montes Universidad Veracruzana, Facultad de Ciencias Biológicas y Agropecuarias región Tuxpan. Tuxpan de Rodríguez Cano, Veracruz, México - Universidad Nacional Autónoma de México, Facultad de Medicina, Unidad de Medicina Experimental, Centro de Medicina Tropical. Ciudad de México, México

DOI: https://doi.org/10.52973/rcfcv-e33221

Palabras clave: Abortos, anaplasmosis bovina, babesiosis bovina, infertilidad, enfermedades reproductivas tropicales

Resumen

El objetivo de este estudio fue identificar la presencia de patógenos transmitidos por garrapatas como la causa probable de problemas reproductivos en vacas procedentes de una explotación comercial de doble propósito que viven en condiciones tropicales en el norte de Veracruz, México. Como parte del control reproductivo del rebaño, se realizó ecografía periódicamente y se detectó la presencia de tres vacas abiertas (no preñadas) con historia de infertilidad. Se extrajeron los ovarios de las dos vacas abiertas, así como el feto momificado de una tercera, y se obtuvieron dos conjuntos de muestras de tejido. El análisis histopatológico reveló la presencia de anomalías foliculares. Las pruebas de ADN revelaron la presencia de Anaplasma marginale, Babesia bigemina y/o Babesia bovis. En conclusión, el presente trabajo representa el primer reporte de patógenos transmitidos por garrapatas en muestras de tejido ovárico y un feto momificado de vacas infértiles en condiciones tropicales en el norte de Veracruz, México, destacando la posibilidad de que muchos problemas reproductivos en condiciones tropicales puedan ser causados por patógenos transmitidos por garrapatas.

Citas

ALLEN, G.P. The pregnancy that doesn't stay-lessons from 25 years of observation. Vet. J. 153: 239–244. 1997. https://doi.org/d8wmkp.

ALMEIDA, A.P.; MARCILI, A.; LEITE, R.C.; NIERI-BASTOS, F.A.; DOMINGUES, L.N.; MARTINS, J.R.; LABRUNA, M.B. Coxiella symbiont in the tick Ornithodoros rostratus (Acari: argasidae). Ticks. Tick. Dis. 3: 203–206. 2021. https://doi.org/f37cnr.

CLOTHIER, G.; WAPENAAR, W.; KENNY, E.; WINDHAM, E. Farmers' and veterinary surgeons' knowledge, perceptions and attitudes towards cattle abortion investigations in the UK. Vet. Rec. Open. 187: 447. 2020. https://doi.org/grd9zx.

CORREA, W.M.; CORREA, C.N.; GOTTSCHALK, A.F. Bovine abortion associated with Anaplasma marginale. Can. J. Comp. Med. 42: 227–228. 1978.

DUGAT, T.; HACIANE, D.; DURAND, B.; LAGRÉE, A.C.; HADDAD, N.; BOULOUIS, H.J. Identification of a Potential Marker of Anaplasma phagocytophilum Associated with Cattle Abortion. Transbound. Emerg. Dis. 64: e1–e3. 2017. https://doi.org/gbwj38.

ESTEVE-GASENT, M.D.; RODRÍGUEZ-VIVAS, R.I.; MEDINA, R.F.; ELLIS, D.; SCHWARTZ, A.; CORTÉS-GARCIA, B.; HUNT, C.; TIETJEN, M.; BONILLA, D.; THOMAS, D.; LOGAN, L.L.; HASEL, H.; ALVAREZ-MARTÍNEZ, J.A.; HERNÁNDEZ-ESCAREÑO, J.J.; MOSQUEDA-GUALITO, J.; ALONSO-DÍAZ, M.A.; ROSARIO-CRUZ, R.; SOBERANES-CÉSPEDES, N.; MERINO-CHARREZ, O.; HOWARD, T.; PÉREZ DE LEÓN, A. A. Research on Integrated Management for Cattle Fever Ticks and Bovine Babesiosis in the United States and Mexico: Current Status and Opportunities for Binational Coordination. Pathog. 9: 871. 2020 https://doi.org/f7fc.

FOLMER, O.; BLACK, M.; HOEH, W.; LUTZ, R.; VRIJENHOEK, R. DNA primers for amplification of mitochondrial cytochrome c oxidase subunit I from diverse metazoan invertebrates. Mol. Marine. Biol. Biotechnol. 3: 294–299. 1994.

GIVENS, M.D. A clinical, evidence-based approach to infectious causes of infertility in beef cattle. Theriogenol. 66: 648–654. 2006. https://doi.org/bmvbbp.

HENKER, L.C.; LORENZETT, M.P.; FAGUNDES-MOREIRA, R.; DALTO, A.; SONNE, L.; DRIEMEIER, D.; SOARES, J.F.; PAVARINI, S.P. Bovine abortion, stillbirth and neonatal death associated with Babesia bovis and Anaplasma spp. infections in southern Brazil. Ticks. Tick. Dis. 11: 101443. 2020. https://doi.org/jzcz.

HURTADO, O.J.B.; GIRALDO-RÍOS, C. Economic and health impact of the ticks in production animals. In: Abubakar, M.; Perera, P.K. (Eds.). Ticks and Tick-Borne Pathogens. IntechOpen 2019, London, UK. Pp. 1–19. 2019.

SARANGI, L.N.; THARANI, N.; POLAPALLY, S.; RANA, S.K.; THODANGALA, N.; BAHEKAR, V.S.; PRASAD, A.; CHANDRASEKHAR–REDDY, R.V.; SURENDRA, K.S.N.L.; GONUGUNTLA, H.N.; PONNANNA, N.M.; SHARMA, G.K. Infectious bovine abortions: observations from an organized dairy herd. Braz. J. Microbiol. 52: 439–448. 2021. https://doi.org/ghvx4g.

LUCCHESE, L.; BENKIRANE, A.; HAKIMI, I.; EL IDRISSI, A.; NATALE, A. Seroprevalence study of the main causes of abortion in dairy cattle in Morocco. Vet. Ital. 52: 13–19. 2016. https://doi.org/jzc2.

MAKENOV, M.T.; TOURE, A.H.; KORNEEV, M.G.; SACKO, N.; PORSHAKOV, A.M.; YAKOVLEV, S.A.; RADYUK, E.V.; ZAKHAROV, K.S.; SHIPOVALOV, A.V.; BOUMBALY, S.; ZHURENKOVA, O.B.; GRIGOREVA, Y.E.; MOROZKIN, E.S.; FYODOROVA, M.V.; BOIRO, M.Y.; KARAN, L.S. Rhipicephalus microplus and its vector-borne haemoparasites in Guinea: further species expansion in West Africa. Parasitol. Res. 120: 1563–1570. 2021. https://doi.org/gjmfvz.

MCCALLON, B.R. Prevalence and economic aspects and anaplasmosis: In: Proceedings of the Sixth National Anaplasmosis Conference. Las Vegas, March 19 and 20, 1973, Nevada, USA. Stillwater, Oklahoma: Heritage Press. Pp. 1-3. 1973.

MURPHY, D.S.; LEE, X.; LARSON, S.R.; JOHNSON, D.K.; LOO, T.; PASKEWITZ, S.M. Prevalence and distribution of human and tick infections with the Ehrlichia muris like agent and Anaplasma phagocytophilum in Wisconsin, 2009-2015. Vector Borne Zoon. Dis. 17: 229–236. 2017.

POTGIETER, F.T.; VAN RENSBURG, L. The persistence of colostral Anaplasma antibodies and incidence of in utero transmission of Anaplasma infections in calves under laboratory conditions. Onderstepoort. J. Vet. Res. 54: 557–560. 1987.

RODRÍGUEZ, S.D.; GARCÍA, O.M.A.; JIMÉNEZ, O.R.; VEGA Y MURGUÍA, C.A. Molecular epidemiology of bovine anaplasmosis with a particular focus in Mexico. Infect. Genet. Evol. 9: 1092–1101. 2009. https://doi.org/dv76js.

ROMERO, C.; PARDO, M.; GRILLO, M.J.; DÍAZ, R.; BLASCO, J.M.; LÓPEZ-GOÑI, I. Evaluation of PCR and indirect enzyme-linked immunosorbent assay on milk samples for diagnosis of brucellosis in dairy cattle. J. Clin. Microbiol. 33: 3198–3200. 1995. https://doi.org/jzc4.

SUBEKTI, D.T.; FATMAWATI, M.; KHOIRIYAH, A.; PRAMESTHI, A.; FONG, S.; DESEM, M.I.; AZMI, Z.; KUSUMANINGTYAS, E.; ENDRAWATI, D.; PURWANTO, E.S. Seroprevalence of Seven Reproductive Diseases in Beef and Dairy Cows from Three Provinces in Indonesia. Vet. Med. Int. 2021(2): e6492289. 2021. https://doi.org/jzc5.

TRUEMAN, K.F.; MCLENNAN, M.W. Bovine abortion due to prenatal Babesia bovis infection. Aus. Vet. J. 64: 63. 1987.

VITAL-BRAZIL, J.M.; BALASSIANO, I.T.; OLIVEIRA, F.S.; COSTA, A.D.; HILLEN, L.; PEREIRA, M.M. Multiplex PCR-based detection of Leptospira in environmental water samples obtained from a slum settlement. Mem. Inst. Oswaldo. Cruz. 105: 353–355. 2010. https://doi.org/dn8bfp.