Etiología y susceptibilidad antibiótica de bacterias causantes de Linfadenitis cervical en cobayos (Cavia porcellus) reproductoras clínicamente enfermas

  • Víctor Carhuapoma–Delacruz Universidad Nacional de Huancavelica, Centro de Investigación Científica Multidisciplinaria de Ingeniería. Huancavelica, Perú https://orcid.org/0000-0002-4330-6099
  • Yola Ramos–Espinoza Universidad Nacional de Huancavelica, Escuela Profesional de Zootecnia. Huancavelica, Perú
  • Rufino Paucar–Chanca Universidad Nacional de Huancavelica, Laboratorio de Mejoramiento Genético. Huancavelica, Perú
  • Nicasio Valencia-Mamani Universidad Nacional de Huancavelica, Centro de Investigación Científica Multidisciplinaria de Ingeniería, Laboratorio de Salud Animal. Huancavelica, Perú
  • Mario Esparza Universidad Privada Antenor Orrego, Facultad de Medicina Humana, Laboratorio GENERBIM. Trujillo, Perú

Resumen

La linfadenitis en el Cuy –C– (Cavia porcellus) es de importancia clínica, pero su etiología y tratamientos terapéuticos siguen siendo insuficiente en el campo de la Medicina Veterinaria; por ello se planteó en identificar la etiología y su susceptibilidad antibiótica de bacterias causales de Linfadenitis cervical (LC) en C reproductoras clínicamente enfermas. Se trabajó con 50 C de raza Perú, clínicamente afectadas por esta enfermedad (25 con abscesos externos y 25 con abscesos internos). Se tomaron 25 muestras independientes mediante punción/aspiración de los ganglios linfáticos de cada grupo. Las muestras fueron cultivadas en medios ABS, TSA, BHI, suplementados con sangre de alpaca, enriquecidos con caldo FTM e incubadas a 37 °C durante 48 horas. La identificación de las bacterias se hizo mediante caracterización morfológica, microscópica, prueba de Camp y bioquímicas. La susceptibilidad antibiótica se evaluó mediante el método Kirby-Bauer utilizando seis antibióticos usuales del mercado veterinario. Se encontraron elevadas frecuencias de Streptobacillus moniliformis (100 y 96 %), Streptococcus pyogenes (96 y 100 %) y Streptococcus zooepidemicus (96 y 92 %) con estrecha asociación entre las tres bacterias para abscesos externos e internos y con presencia de multiresistencia antibiótica a más de tres antibióticos (ampicilina, oxitetraciclina, amoxicilina, cloranfenicol), con respuesta de sensibilidad a penicilina (26-29 %) y gentamicina (23-26 %) como posible éxito terapéutico. Los abscesos subcutáneos externos e internos con LC en C evidenciaron predominancia de bacteria Gram negativas S. moniliformis, S. pyogenes y S. zooepidemicus multidrogaresistente con elevadas frecuencias.

Descargas

La descarga de datos todavía no está disponible.

Citas

ANAYA–UREÑA, A. Relación entre asociatividad y productividad de los productores de cuyes en la provincia de Chupaca, Región Junín 2018. Universidad Nacional Agraria La Molina. Lima Perú. Tesis de Grado. Pp 140. 2020.

AGUILAR, R.G.; BUSTAMANTE, L.J.; BAZÁN, R.V.; FALCÓN, P.N. Diagnóstico situacional de la crianza de cuyes en una zona de Cajamarca. Rev. Investig. Vet. Perú. 22(1): 9–14. 2011.

AVRIL, J.L.; DONNIO, P.Y.; POUEDRAS, P. Selective medium for Pasteurella multocida and its use to detect oropharyngeal carriage in pig breeders. J. Clin. Microbiol. 28(6): 1438–1440. 1990.

ABBOTT, Y.; ACKE, E.; KHAN, S.; MULDOON, E.G.; MARKEY, B.K.; PINILLA, M.; LEONARD, F.C.; STEWARD, K.; WALLER, A. Zoonotic transmission of Streptococcus equi subsp. zooepidemicus from a dog to a handler. J. Med. Microbiol. 59(1): 120–123. 2010.

ANZAI, T.; WALKER, J.A.; BLAIR, M.B.; CHAMBERS, T.M.; TIMONEY, J.F. Comparison of the phenotypes of Streptococcus zooepidemicus isolated from tonsils of healthy horses and specimens obtained from foals and donkeys with pneumonia. Am. J. Vet. Res. 61(2): 162–166. 2000.

ASENJO, A.; OTEO–IGLESIAS, J.; ALÓS, J.I. What’s new in mechanisms of antibiotic resistance in bacteria of clinical origin?. Enferm. Infecc. Microbiol. Clin. 39(6): 291–299. 2021.

BONAGURA, J. Tratamientos especiales, cuidados intensivos, toxicología y enfermedades infecciosas. Kirk: Terapéutica Veterinaria de Pequeños Animales. McGRAW-HILL Interamericana de España. España. Pp 1475. 2001.

BISNO, A.L.; GERBER, M.A.; GWALTNEY, J.M.; KAPLAN, E.L.; SCHWARTZ, R.H. Infectious Diseases Society of America. Practice guidelines for the diagnosis and management of group A streptococcal pharyngitis. Infectious Diseases Society of America. Clin. Infect. Dis. 35(2): 113–125. 2002.

BEMIS, D.A.; JOHNSON, B.H.; BRYANT, M.J.; JONES, R.D.; MCCLEERY, B.V.; GREENACRE, C.B.; PERRETEN, V.; KANIA, S.A. Isolation and identification of Caviibacter abscessus from cervical abscesses in a series of pet guinea pigs (Cavia porcellus). J. Vet. Diagn. Invest. 28(6): 763–769. 2016.

BREIJYEH, Z.; JUBEH, B.; KARAMAN, R. Resistance of Gram-Negative Bacteria to Current Antibacterial Agents and Approaches to Resolve It. Molecul. 25(6): 1340. 2020.

BUTAYE, P.; DEVRIESE, L.A.; HAESEBROUCK, F. Antimicrobial growth promoters used in animal feed: effects of less well known antibiotics on Gram-positive bacteria. Clin. Microbiol. Rev. 16(2): 175–188. 2003.

CABALLERO–MORA, F. J.; POZO–ROMÁN, J.; JIMÉNEZ–ORTEGA, A. I.; OLLERO–CAPRANI, J.M.; ARGENTE, J. Cervical lymphadenitis mimicking a goiter. An. Pediatr. 78(5): 337–338. 2013.

CARHUAPOMA–DELACRUZ, V.; VALENCIA–MAMANI, N.; HUAMAN–GONZALES, T.; PAUCAR–CHANCA, R.; HILARIO–LIZANA, E.; HUERE–PEÑA, J.L. Resistencia antibiótica de Salmonella spp., Escherichia coli aisladas de alpacas (Vicugna pacus) con y sin diarrea. LA GRANJA. Rev. Cien. Vida. 31(1): 98–109. 2020.

CHAUCA–FRANCIA, L. Sanidad: Enfermedades infecciosas bacterianas. Manual de crianza de cuyes. Instituto Nacional de Innovación Agraria – INIA. Lima, Perú. Pp. 53. 2020.

CONCHA–MONROY, D. Identificación de la Etiología de abscesos subcutáneos (Linfadenitis) en cuyes (Cavia porcellus) en etapa de crecimiento mediante aislamiento microbiológico. Universidad Católica de Santa María. Arequipa, Perú. Tesis de Grado. Pp 89. 2014.

CHACÓN–VERA, F.; QUINTO–LAUREL, J. Efectos de la producción y comercialización de cuyes en los ingresos económicos de las familias del distrito de Maranura, provincia de La Convención, Cusco, Periodo 2018. Universidad Andina del Cusco. Cuzco Perú. Tesis de Grado. Pp 96. 2021.

DANIEL, W. Algunas distribuciones muéstrales de proporcionalidad. Distribución de la media de la muestra. Bioestadística: Base para el análisis de las ciencias de la salud. 4ta. Ed. México. Limusa. Pp. 924. 2007.

De BUEN de A, N. Métodos y técnicas en el laboratorio de citopatología veterinaria. Atlas de Citología,Patología Veterinaria. Inter-Médica. Buenos Aires, República Argentina. Pp. 360. 2014.

CLINICAL AND LABORATORY STANDARDS INSTITUTE (CLSI). Normas de rendimiento para pruebas de susceptibilidad a los antimicrobianos: Tablas actualizadas para los estándares M02, M07 y M11 de pruebas de susceptibilidad antimicrobiana del Clinical and Laboratory Standards Institute. 32 th. Ed. Pp. 362. 2022.

ESTUPIÑÁN, P.; BURGOS, A.; CHACHA, S.; BAQUERO, M.I.; GÓMEZ, C.; SÁNCHEZ, X.; SOQUE, A. Linfadenitis en un plantel productor de cuyes. Ecuador es Calidad. Rev. Cientif. Ecuatoriana. 5(1): 1–3. 2018.

FULDE. M.; VALENTIN–WEIGAND, P. Epidemiology and pathogenicity of zoonotic streptococci. Curr. Top. Microbiol. Immunol. 368: 49–81. 2013.

FU, Q.; LI, W.; LI, S.; ZHAO, X.; XIE, H.; ZHANG, X.; LI, K.; MA, C., LIU, X. CD44 facilitates adherence of Streptococcus equi subsp. zooepidemicus to LA-4 cells. Microb. Pathog. 128: 250–253. 2019.

GARCÍA–CALLEJO, F.; CALVO–GONZÁLEZ, J.; AGUSTÍ–MARTÍNEZ, J.; BÉCARES–MARTÍNEZ, C.; MONZÓ–GANDÍA, R.; MARCO–ALGARRA, J. Linfadenitis de cuello por granuloma de silicona tras implantes mamarios. Act. Otorrinolaring. Esp. 64(3): 217–222. 2013.

GARCÍA–BLANCAS, P.; MENDOZA–MEDELLÍN, A. Pruebas bioquímicas tradicionales y de alta resolución para identificación manual de Enterobacterias. Act. Bioq. Clin. Latin. 48(2): 249–254. 2014.

GAMARRA, G.; RIVERA. P.; WONG, F.; PUJAY, O. Estadística e Investigación con Aplicaciones de SPSS: Análisis de varianza con aplicativos de SPSS. 2da. Ed. Perú: San Marcos. Pp. 352. 2019.

GONZÁLEZ, N.; ZAPATA, C.; SÁNCHEZ, D.; CHÁVEZ, M. Resistencia a antibióticos β-lactámicos y Eritromicina en bacterias de la Cavidad Oral. Nova. 18(34): 27–45. 2020.

HAWKINS, M.; BISHOP, C.R. Disease Problems of Guinea Pigs: Ferrets, Rabbits, and Rodents. Clin. Med. Surg. Elsevier Inc. Pp. 295–310. 2012.

KAHN, C. Patología clínica y procedimientos. Manual de Merck de Veterinaria. 6ta. Ed. España. Oceano/Centrum. Pp. 1405. 2000.

MAINATO–GUAMÁN, M.; REDROVAN–MACANCELA, S. Resistencia bacteriana en los animales de producción y su riesgo en la Salud Pública del Ecuador. Rev. Cientif. Ecuatoriana. 7(1): 76. 2020.

McEWEN, S.A.; FEDORKA–CRAY, P.J. Antimicrobial use and resistance in animals. Clin. Infect. Dis. 34(3): 93–106. 2002.

MESCCO–JORGE, R. Sensibilidad Farmacológica del Agente Etiológico de la Linfadenitis en cuyes del Centro de Producción de Reproductores Huayllapampa–San Jerónimo, Agencia Agraria Cusco. Universidad Nacional de San Antonio Abad del Cusco. Cuzco Perú. Tesis de Grado. Pp. 116. 2019.

MOTA–ROJAS, D.; TRUJILLO–ORTEGA, M.; BECERRIL–HERRERA, M.; ROLDAN–SANTIAGO, P.; GONZÁLES–LOZANO, M.; GUERRERO–LEGARRETA, I. Efecto del método de sacrificio sobre variables críticas sanguíneas y consecuencias sobre la bioquímica de la carne de cobayo. Rev. Cientif. FCV-LUZ. XXII(1): 51–58. 2012.

MURPHY, J.C.; ACKERMAN, J.I.; MARINI, R.P.; FOX, J.G. Cervical lymphadenitis in guinea pigs: infection via intact ocular and nasal mucosa by Streptococcus zooepidemicus. Lab. Anim. Sci. 41(3): 251–254. 1991.

MURRAY, P.; ROSENTHAL, K., PFALLER, M. Diagnóstico de laboratorio de las enfermedades bacterianas. Microbiología Médica. 9na. Ed. España, S.L.U. Pp. 848. 2021.

NICKLAS, W.; BANEUX, P.; BOOT, R.; DECELLE, T.; DEENY, A.A.; FUMANELLI, M.; ILLGEN-WILCKE, B. FELASA (Federation of European Laboratory Animal Science Associations Working Group on Health Monitoring of Rodent and Rabbit Colonies). Recommendations for the health monitoring of rodent and rabbit colonies in breeding and experimental units. Lab. Anim. 36(1): 20–42. 2002.

NGOULA, F.; GUEMDJO–TEKAM, M.; KENFACK, A.; TADONDJOU–TCHINGO, C.D.; NOUBOUDEM, S.; NGOUMTSOP, H.; TSAFACK, B.; TEGUIA, A.; KAMTCHOUING, P.; GALEOTTI, M.; TCHOUMBOUE, J. Effects of heat stress on some reproductive parameters of male cavie (Cavia porcellus) and mitigation strategies using guava (Psidium guajava) leaves essential oil. J. Therm. Biol. 64: 67–72. 2017.

ORTIZ–OBLITAS, P.; FLORIÁN–ALCÁNTARA, A.; ESTELA–MANRIQUE, J.; RIVERA–JACINTO, M.; HOBÁN–VERGARA, C.; MURGA–MORENO, C. Caracterización De La Crianza De Cuyes En Tres Provincias De La Región Cajamarca, Perú. Rev. Investig. Vet. Perú. 32(2): e20019. 2021.

PASCUAL, M.; CRUZ, D.J.; BLASCO, A. Modeling production functions and economic weights in intensive meat production of guinea pigs. Trop. Anim. Health Prod. 49(7): 1361–1367. 2017.

PÉREZ DE P, I.; DE LA QUINTANA–BELTRÁN, P.; BERMÚDEZ–RUIZ, P. Linfadenitis cervical por Mycobacterium avium en adulto inmunocompetente. Enf. Infecc. Microbiol. Clin. 25(2): 159–164. 2007.

PHILLIPS, I. Manual de Cowan y Steel para la identificación de bacterias médicas. J. Clin. Pathol. 46(10): 975.1993.

PROVENZANI, A.; HOSPODAR, A.R.; MEYER, A.L.; LEONARDI-VINCI, D.; HWANG, E.Y.; BUTRUS, C.M.; POLIDORI, P. Multidrug-resistant gram-negative organisms: a review of recently approved antibiotics and novel pipeline agents. Intern. J. Clin. Pharm. 42(4): 1016–1025. 2020.

RADOSTITS–OTTO, M.; GAY–CLIVE, C.; BLOOD–DOUGLAS, C.; HINCHCLIFF–KENNETH, W.; ARUNDEL, J.H.; JACOBS, D.E.; LESLIE, K.E. Tratado de las enfermedades del ganado bovino, ovino, porcino, caprino y equino. Medicina Veterinaria. Madrid: McGraw-Hill-Interamericana de España, S.A.U. Pp. 494. 2002.

SÁNCHEZ–MACÍAS, D.; BARBA–MAGGI, L.; MORALES–DELANUEZ, A.; PALMAY–PAREDES, J. Guinea pig for meat production: A systematic review of factors affecting the production, carcass and meat quality. Meat Sci. 143: 165–176. 2018.

SARRIA–BARDALES, J.; VERGARA–RUBÍN, V.; CANTARO–SEGURA, J.; ROJAS, P. Evaluación de niveles de energía digestible en dos sistemas de alimentación en la respuesta productiva y reproductiva de cuyes (Cavia porcellus). Rev. Investig. Vet. Perú. 30(4): 1515–1526. 2019.

SUTCLIFFE, J.; TAIT–KAMRADT, A.; WONDRACK, L. Streptococcus pneumoniae and Streptococcus pyogenes resistant to macrolides but sensitive to clindamycin: a common resistance pattern mediated by an efflux system. Antimicrob. Agents. Chemother. 40(8): 1817–1824.1996.

SUARDÍAZ, R.; LYTHELL, E.; HINCHLIFFE, P.; VAN DER KAMP, M.; SPENCER, J.; FEY, N.; MULHOLLAND, A.J. Mecanismo catalítico de la proteína de resistencia a la colistina MCR-1. Org. Biomol. Chem. 19 (17): 3813–3819. 2021.

SERVICIO NACIONAL DE METEOROLOGÍA E HIDROLOGÍA (SENAMHI). Datos hidrometeorológicos a nivel nacional–2013. Pp. 23. 2021.

WEICHBROD, R.H.; THOMPSON, G.A.; NORTON, J.N. Gestión de programas de cuidado y uso de animales en investigación, educación y pruebas: Evolución de la gestión del programa de animales de laboratorio. 2da. Ed. Corporativo Grupo Taylor & Francis. Prensa CRC. Pp. 900. 2017.

Publicado
2022-09-16
Cómo citar
1.
Carhuapoma–Delacruz V, Ramos–Espinoza Y, Paucar–Chanca R, Valencia-Mamani N, Esparza M. Etiología y susceptibilidad antibiótica de bacterias causantes de Linfadenitis cervical en cobayos (Cavia porcellus) reproductoras clínicamente enfermas. Rev. Cient. FCV-LUZ [Internet]. 16 de septiembre de 2022 [citado 24 de noviembre de 2024];32:1-. Disponible en: https://produccioncientificaluz.org/index.php/cientifica/article/view/38756
Sección
Medicina Veterinaria