Parasitismo gastrointestinal en cuyes (Cavia porcellus) de tres comunidades de Huancavelica, Perú

• Víctor Carhuapoma-Delacruz Universidad Nacional de Huancavelica, Centro de Investigación Científica Multidisciplinaria de Ingeniería. Huancavelica, Perú https://orcid.org/0000-0002-4330-6099
• Nicasio Valencia–Mamani Universidad Nacional de Huancavelica, Centro de Investigación Científica Multidisciplinaria de Ingeniería, Laboratorio de Salud Animal. Huancavelica, Perú
• Epifanio Lizana–Hilario Universidad Nacional de Huancavelica, Centro de Investigación Científica Multidisciplinaria de Ingeniería, Laboratorio de Salud Animal. Huancavelica, Perú
• Rodrigo Huaman-Jurado Universidad Nacional de Huancavelica, Escuela Profesional Zootecnia. Huancavelica, Perú
• Daniel Alexis Zárate-Rendón Universidad Nacional Agraria La Molina, Facultad de Zootecnia, Departamento Académico de Nutrición, Laboratorio de Parasitología. Lima, Perú
• Mario Esparza Universidad Privada Antenor Orrego, Facultad de Medicina Humana, Laboratorio GENERBIM. Trujillo, Perú

DOI: https://doi.org/10.52973/rcfcv-e32122

Palabras clave: Emeriosis, cuyes, nematodos, parásitos, protozoos

Resumen

Las parasitosis producidas por protozoarios y helmintos constituyen problemas sanitarios en la crianza productiva de cuyes (C) raza Perú; sin embargo, conocimientos relacionados a su etiología, dinámica de infección y epidemiología son limitados. Esto dificulta el diseño de programas de control óptimo y rentable. Se identificó la presencia de parásitos gastrointestinales en C de comunidades de Huando, Mariscal Cáceres y Yauli, Huancavelica-Perú, determinándose la fauna, frecuencia, carga parasitaria, grado de infección y su relación con procedencias y sexo. Se muestrearon 156 C entre ambos sexos, se recolectó 20 gramos (g) de heces por animal y se analizaron por técnicas coprológicas de flotación – sedimentación, Ziehl–Neelsen modificada y McMaster Modificado. La prevalencia de endoparásitos fue 82,5 %: siendo los protozoarios más frecuentes con 82,7 %, que los Nematodos, con 38,5 %. Eimeria caviae tuvo frecuencias de 85,7; 80,0 y 83,3 % en comunidades de Huando, Mariscal Cáceres y Yauli, respectivamente. Strongyloides spp. y Trichuris spp. presentaron frecuencias de 35,7 y 28,6 % para Huando. E. caviae (12-30 %) y Cryptosporidium spp. (5-12 %) en C procedentes de Huando y Mariscal Cáceres. Los promedios de carga parasitaria, expresada en ooquistes por g para E. caviae fueron 1.029,17 en Huando, para Mariscal Cáceres 571,43 y en Yauli 1.126,67, el resto de parásitos presentaron carga de huevos de valores mínimos con grado de infección baja (≤ 200 huevos por g). La E. caviae, Cryptosporidium spp. y Strongyloides spp. fueron los más frecuentes, con altas cargas parasitarias y grado infección en C productoras.

Citas

ACHARYA, M.; BURKE, J.M.; MILLER, J.E.; TERRILL, T.H.; WOOD, E.L.; MUIR, J.P. Quebracho tannins aid in the control of Eimeria spp. and gastrointestinal nematodes in lambs and goat kids. Vet. Parasitol. 288: 109295. 2020.

ALEUY, O.A.; KUTZ, S. Adaptations, life-history traits and ecological mechanisms of parasites to survive extremes and environmental unpredictability in the face of climate change. Intern. J. Parasitol. Parasites and Wildlife. 12: 308-317. 2020.

BECERRA–VÁSQUEZ, B. Frecuencia de parásitos gastrointestinales en las unidades productivas de cuyes (Cavia porcellus) de crianza intensiva en el Distrito de Moquegua. Universidad Científica del Sur, Lima –Peru.Tesis de Grado. 66 pp. 2015.

BECKER, A.C.; KRAEMER, A.; EPE, C.; STRUBE, C. Sensitivity and efficiency of selected coproscopical methods-sedimentation, combined zinc sulfate sedimentation-flotation, and McMaster method. Res. Parasitol. 115(7): 2581-2587. 2016.

BENAVIDES, O.E. La técnica de sedimentación y McMaster para la búsqueda de huevos de trematodos y cestodos. Técnicas para el diagnóstico de endoparásitos de importancia Veterinaria. Bogotá. Universidad de La Salle. Pp 94. 2013.

BRAMBILLA, A.; VON HARDENBERG, A.; NELLI, L.; BASSANO, B. Distribution, status, and recent population dynamics of Alpine ibex Capra ibex in Europe Mammal. Rev. 50(3): 267-277. 2020.

BRIONES-MONTERO, A.; SALAZAR-RODRÍGUEZ, I.; SUÁREZ-VEIRANO, G.; GELDHOF, P.; ZÁRATE-RENDÓN, D. Prevalencia y carga parasitaria mensual de nematodos gastrointestinales y Fasciola hepática en bovinos lecheros de dos Distritos del Valle del Mantaro, Junín, Perú. Rev. Inv. Vet. Perú. 31(2): e17819. 2020.

CAI, W.; RYAN, U.; XIAO, L.; FENG, Y. Zoonotic Giardiasis: An update. Res. Parasitol. 120(12): 4199-4218. 2021.

CURIPOMA–MAISINCHO, V. Prevalencia de parásitos gastrointestinales en cuyes de producción (Cavia porcellus), con el método coprológico. Universidad Politécnica Salesiana. Cuenca, Ecuador. Trabajo de Grado. 86 pp. 2020.

CHÁVEZ, V.A.; SÁNCHEZ, R.L.; ARANA D.C.; SUÁREZ, A.F. Resistencia a antihelmínticos y prevalencia de faciolosis bovina en la Ganadería Lechera de Jauja, Perú. Rev. Inv. Vet. Perú. 23(1): 90-97. 2012.

DANIEL, W. Algunas distribuciones muéstrales importantes. Bioestadística. Base para el análisis de las ciencias de la salud. 4ta. Ed. México: Limusa. Pp 924. 2007.

DA SILVA, A.G.; GALLAS, M.; FRAGA, E.; PÉRICO, E. Paraspidodera uncinata (Nematoda, Lauroiinae) comoparasita de Cavia magna e Caviaaperea (Rodentia, Caviidae) no Sul doBrasil. Rev. Biotemas 28(2): 97-102. 2015.

DICKO, A.; SANOU, M.; TAMBOURA, H.H.; BAYALA, B.; SALISSOU, I.; TRAORÉ, A.; LOGAN, L.L.; TEMBELY, S. Epidemiology and spatio-temporal distribution of gastrointestinal parasites infection and accuracy of FAMACHA test in sheep in traditional farming systems in Burkina Faso. Trop. Anim. Health Prod. 53(3): 392. 2021.

ENSUNCHO-HOYOS, C.; CASTELLANO-CORONADO, A.; MAZA-ÁNGULO, L.; BUSTAMANTE-YÁNEZ, M.; VERGARA-GARAY, O. Prevalencia y grado de infección de nematodos gastrointestinales en ovinos de pelo en pastoreo de cuatro municipios de Córdoba, Colombia. Rev. Cientif. XXIV(5): 414-420. 2014.

FLAUSINO, G.; BERTO, B.; MCINTOSH, D.; FURTADO, T.; TEIXEIRA, W.; LOPES, C. Phenotypic and Genotypic Characterization of Eimeria caviae from Guinea Pigs (Cavia porcellus). Acta Protozool. 53(3): 269-276. 2014.

FIGUEROA-CASTILLO, J.A.; JASSO-VILLAZUL, C.; LIÉBANO-HERNÁNDEZ, E.; MARTÍNEZ-LABAT, P.; RODRÍGUEZ-VIVAS, R.I.; ZÁRATE-RAMOS J.J.; Examen coproparasitoscópico. En: Técnicas para el diagnóstico de parásitos con importancia en salud pública y veterinaria. México: AMPAVE-CONASA. Pp. 78-128. 2015.

GARCÍA, C.; CHÁVEZ, A.; PINEDO, R.; SUAREZ, F. Helmintiasis gastrointestinal en cuyes (Cavia porcellus) de granjas de crianza familiar-comercial en Ancash, Perú. Rev. Inv. Vet. Perú. 24(4): 473-479. 2013.

HUAMÁN, M.; KILLERBY, M.; CHAUCA, L. Frecuencia de parásitos gastrointestinales en cuyes reproductoras de crianza intensiva. Salud Tecnol. Vet. 7(2): 59-66. 2020.

KAFLE, P.; PEACOCK, S.J.; GROND, S.; ORSEL, K.; KUTZ, S. Correction to: Temperature-dependent development and freezing survival of protostrongylid nematodes of Arctic ungulates: implications for transmission. Parasit. Vectors. 11(1): 446. 2018.

KAFLE, P.; PEACOCK, S.J.; GROND, S.; ORSEL, K.; KUTZ, S. Temperature-dependent development and freezing survival of protostrongylid nematodes of Arctic ungulates: implications for transmission. Parasit. Vectors. 11(1): 400. 2018.

KURNOSOVA, O.P.; ARISOV, M.V.; ODOYEVSKAYA, I.M. Intestinal Parasites of Pets and Other House-kept Animals in Moscow. Helmintol. 56(2): 108-117. 2019.

MINISTERIO DE AGRICULTURA DEL PERU (MINAG). Diagnóstico de Crianzas Priorizadas para el plan ganadero. Pp 35. 2017.

MCHARDY, I.H.; WU, M.; SHIMIZU-COHEN, R.; COUTURIER, M.R.; HUMPHRIES, R.M. Detection of intestinal protozoa in the clinical laboratory. J. Clin. Microbiol. 52(3): 712-720. 2014.

OKULEWICZ, A. The impact of global climate change on the spread of parasitic nematodes. Ann. Parasitol. 63(1):15-20. 2017.

ORDOÑEZ-NORIEGA, R. Plan de introducción de la carne de cuy en Lima Metropolitana: Estudio de mercado y Propuesta empresarial. Pontificia Universidad Católica del Perú. Lima Perú. Tesis de Postgrado. 213 pp. 2013.

RÍOS, Z.W.; PINEDO, V.R.; CASAS, A.E.; ABAD, A.D.; CHÁVEZ, V.A. Prevalencia de helmintiasis gastrointestinal en cuyes (Cavia porcellus) de crianza familiar-comercial en Junín, Perú. Rev. Inv. Vet. Perú, 31(2): e17817. 2020.

ROCANO –MARCATOMA, E. Prevalencia de parásitos intestinales en cuyes de producción (Cavia porcellus) mediante las técnicas de flotación y sedimentación. Universidad Politécnica Salesiana Sede Cuenca. Cuenca – Ecuador. Tesis de Grado. 96 pp. 2021.

SALGADO-MORENO, S.; MARTINEZ-GONZALEZ, S.; PEÑA-PARRA, B.; CARRILLO-DÍAZ, F. Estudio preliminar de la parasitosis en cuyes de una granja familiar. Rev. Cien. Salud. 5(17): 15-19. 2018.

SÁNCHEZ-BALBÍN, J. Estimación del parasitismo gastrointestinal en cuyes (Cavia porcellus) de la ciudad de Huancayo – Departamento de Junín. Universidad Nacional Mayor de San Marcos. Huancayo – Perú. Tesis de Grado. 112 pp. 2013.

SARTI, H.L.; MACHADO, L.C.; HONORATO, L.; DA SILVA, B.; DO AMARANTE, A.F.; BRICARELLO, P.A. The Effect of Gastrointestinal Nemato de Infection Level on Grazing Distance from Dung. PLOS ONE. 10(6): e0126340. 2015.

SERVICIO NACIONAL DE METEOROLOGÍA E HIDROLOGÍA (SENAMHI). Datos hidrometeorológicos a nivel nacional. Pp 17. 2017.

SUÁREZ, F.A.; MORALES-CAUTI, S.; VILLACAQUI, A.G. Estudio de la parasitosis gastrointestinal en cuyes (Cavia Porcellus) de crianza intensiva de la Provincia de Concepción, Junín. Científ. 11(1): 17-29. 2014.

THRUSFIELD, M. Conceptos epidemiológicos generales. Epidemiología Veterinaria: Principios y métodos. 1ra. Ed. Volumen 1. Zaragoza (España): Acribia, S.A. 352 pp. 1997.

TOURNADE, C.M.; FINK, D.M.; WILLIAMS, S.R.; MANS, C. Effects of Tinidazole on Food Intake in Chinchillas (Chinchilla lanigera). J. Am. Assoc. Lab. Anim. Sci. 60(5): 587-591. 2021.

TRAORÉ, A.; NOTTER, D.R.; SOUDRE, A.; KABORÉ, A.; ÁLVAREZ, I.; FERNÁNDEZ, I.; SANOU, M.; SHAMSHUDDIN, M.; PERIASAMY, K.; TAMBOURA, H. H.; GOYACHE, F. Resistance to gastrointestinal parasite infection in Djallonké sheep. Anim. 11(8): 1354-1362. 2017.

TSUKAHARA, Y.; GIPSON, T.A.; HART, S.P.; DAWSON, L.J.; WANG, Z., PUCHALA, R., SAHLU, T.; GOETSCH, A.L. Across and within breed differences in the relationship between packed cell volume and fecal egg count in growing meat goat and hair sheep males naturally and artificially infected with gastrointestinal nematodes. Vet. Parasitol. Regional Studies and Reports 17: 100311. 2019.

VARGAS, R.M.; CHÁVEZ, V.A.; PINEDO, V.R.; MORALES, C.S.; SUÁREZ, A.F. Parasitismo gastrointestinal en dos épocas del año en cuyes (Cavia porcellus) de Oxapampa, Pasco. Rev. Inv. Vet. Perú. 25(2): 276-283. 2014.

VIGNAU, M.; VENTURINI, L.; ROMERO, J.; EIRAS, D.; BASSO, W. Estrongilosis gastrointestinal y pulmonar de rumiantes. Parasitología práctica y modelos de enfermedades parasitarias en los animales domésticos. La Plata: Universidad Nacional La Plata. Pp 194. 2005.

XU, S.; ZHANG, S; HU, X.; ZHANG, B.; YANG, S.; HU, X.; LIU, S.; HU, D.; BAI, J. Temporal and spatial dynamics of gastrointestinal parasite infection in Père David’s deer. Peer J. 5(9): e11335. 2021.

ZANET, S.; FERROGLIO, E.; ORLANDINI, F., BASSANO, B.; BATTISTI, E.; BRAMBILLA, A. Bronchopulmonary Nematodes in Alpine Ibex: Shedding of First Stage Larvae Analyzed at the Individual Host Level. Front. Vet. Sci. 8: 663268. 2021.