La serpiente Bushmaster (Cuaima) (Lachesis muta muta) del bosque Neotropical: descripción de varias actividades hemostáticas y biológicas en su veneno

  • Yuyibeth Montero Laboratorio de Inmunoquímica y Ultraestructura, Instituto Anatómico “José Izquierdo” de la Universidad Central de Venezuela. Caracas, Bolivarian Republic of Venezuela
  • María Eugenia Girón Laboratorio de Inmunoquímica y Ultraestructura, Instituto Anatómico “José Izquierdo” de la Universidad Central de Venezuela. Caracas, Bolivarian Republic of Venezuela
  • Rafael Medina Laboratorio de Inmunoquímica y Ultraestructura, Instituto Anatómico “José Izquierdo” de la Universidad Central de Venezuela. Caracas, Bolivarian Republic of Venezuela
  • Belsy Guerrero Laboratorio de Fisiopatología, Centro de Medicina Experimental, Instituto Venezolano de Investigaciones Científicas (IVIC). Caracas, Bolivarian Republic of Venezuela
  • Luis Fernando Navarrete Laboratorio de Inmunoquímica y Ultraestructura, Instituto Anatómico “José Izquierdo” de la Universidad Central de Venezuela. Caracas, Bolivarian Republic of Venezuela
  • Alexis Rodríguez-Acosta Laboratorio de Inmunoquímica y Ultraestructura, Instituto Anatómico “José Izquierdo” de la Universidad Central de Venezuela. Caracas, Bolivarian Republic of Venezuela https://orcid.org/0000-0003-1234-7522
Palabras clave: Actividad fibrinolítica, bosque neotropical, metaloproteasas, cordillera Turimiquire, Yuyilysin

Resumen

La serpiente Cuaima (Lachesis muta muta) (Lmm) es responsable de envenenamientos que ocurren principalmente en personas que están explorando áreas forestales, en actividades de tala, explotación minera (principalmente oro y diamantes) o pueblos indígenas que viven en pequeñas comunidades y desarrollan su actividad vital en las selvas tropicales y subtropicales del territorio de Lmm venezolano. Se ha purificado una toxina fibrinolítica del veneno de la cuaima mediante cromatografía de exclusión molecular, en columna de cromatografía Sephacryl 300. Las fracciones recolectadas con actividad fibrinolítica alta y escasa acción hemorrágica se fraccionaron adicionalmente mediante una columna de cromatografía de intercambio catiónico Carboximetil-Sepharose (CMS). A partir de CMS se obtuvo una banda única mediante SDS-PAGE, de masa molecular ~26 kDa, denominada Yuyilysin, la cual presentaba actividad fibrinolítica que se perdía por completo tras el tratamiento con ácido etilendiamina tetraacético (EDTA). En conclusión, la yuyilisina mostró un espectro de actividades más amplio, con actividad hemorrágica moderada, no edematogénica, pero con acciones fibrinolíticas y coagulantes intensas.

Descargas

La descarga de datos todavía no está disponible.

Citas

AGUILAR, I.; GUERRERO, B.; SALAZAR, A.M.; GIRÓN, M.E.; PÉREZ, J.; SÁNCHEZ, E.; RODRÍGUEZ-ACOSTA, A. Individual venom variability in the South American rattlesnake Crotalus durissus cumanensis. Toxicon. 50: 214-224. 2007.

ARAGON-ORTIZ, F.; GUBENSEK, F. A thrombin-like enzyme from bushmaster (Lachesis muta stenophyrs) venom. Toxicon. 31: 1435-1443. 1993.

ARAGON-ORTIZ, R.; MENTELE, A.; AUERSWALD, EA. Amino acid sequence of a lectin-like protein from Lachesis muta stenophyrs venom. Toxicon. 34: 763–769. 1996.

BAJWA, S.S.; MARKLAND, F.S.; RUSSELL, F.E. Fibrinolytic enzyme(s) in western diamondback rattlesnake (Crotalus atrox) venom. Toxicon. 18: 285-90. 1980.

DAMICO, D.C.S.; BUENO, L.G.F.; RODRIGUES-SIMIONI, L.; MARANGONI, S.; CRUZ-HOFLING, M.A.; NOVELLO, J.C. Neurotoxic and myotoxic actions from Lachesis muta muta (surucucu) whole venom on the mouse and chick nerve–muscle preparations. Toxicon. 46: 222-229. 2005.

GIRÓN, M.E.; ESTRELLA, A.; SÁNCHEZ, E.E.; GALÁN, J.; TAO, W.A.; GUERRERO, B.; SALAZAR, A.M.; RODRÍGUEZ-ACOSTA, A. Purification and characterization of a metalloproteinase, Porthidin-1, from the venom of Lansberg’s hog-nosed pitvipers (Porthidium lansbergii hutmanni). Toxicon. 57: 608-618. 2011.

KINI, R.M. Anticoagulant proteins from snake venoms: structure function and mechanism. Biochem. J. 397: 377-387. 2006.

KONDO, H.; KONDO, S.; IKESAWA, H.; MURATA, R.; OSHAKA, A. Studies on the quantitative method for determination of hemorrhagic activity of Habu snake venom. Jpn. J. Med. Sci. Biol. 13: 43-51. 1960.

KOVCHA, E. The origin of snakes and evolution of the venom apparatus. Toxicon. 25: 65-106. 1987.

LAEMMLI, U. Cleavage of structural proteins during the assembly of the head of bacteriophage T-4. Nature. 227: 608–609. 1970.

LIJNEN, H.R. Matrix metalloproteinases and cellular fibrinolytic activity. Biochemistry (Moscow). 67(1): 92-98. 2002.

MARKLAND, F.S. Snake venom and hemostatic system. Toxicon. 36: 1749-1800. 1998.

MARSH, N.; WILLIAMS, V. Practical applications of snake venom toxins in haemostasis. Toxicon. 45: 1171-1181. 2005.

MARSH, N.A. Diagnostic uses of snake venom. Haemostasis. 31: 211-217. 2000.

PIFANO, F. Investigación y docencia en Medicina Tropical. Arch. Ven. Med. Trop. Parasitol. Med. 4: 1-203. 1961.

RAN, Y.L.; ZHENG, S.D.; TU, AT. Biochemical characterization of two hemorrhagic proteases from the venom of Lachesis muta (bushmaster). Chem. Res. Toxicol. 1: 337-342. 1988.

REDDY, D.S. Newer thrombolytic drugs for acute myocardial infarction. Indian. J. Exp. Biol. 36: 1-15. 1998.

RENGIFO, C.; RODRÍGUEZ-ACOSTA, A. Serpientes, Veneno y Tratamiento Médico en Venezuela. Caracas: Universidad Central de Venezuela. Pp. 1-272. 2019.

SALAZAR, A.M.; RODRIGUEZ-ACOSTA, A.; GIRÓN, M.E.; AGUILAR, I.; GUERRERO, B. A comparative analysis of the clotting and fibrinolytic activities of the snake venom (Bothrops atrox) from different geographical areas in Venezuela. Thromb. Res. 120: 95-104. 2007.

SÁNCHEZ, E.E.; GIRÓN, M.E.; UZCÁTEGUI, N.L.; GUERRERO, B.; SAUCEDO, M.; CUEVAS, E.; RODRÍGUEZ-ACOSTA, A. Biochemical and biological characterisation of lancehead (Bothrops venezuelensis Sandner 1952) snake venom from the Venezuelan Central Coastal range. Bol. Malariol. Sal. Amb. 54: 138-149. 2014.

SANCHEZ, E.F.; SANTOS, C.I.; MAGALHAES, A.; DINIZ, C.R.; FIGUEIREDO, S.; GILROY, J.; RICHARDSON, M. Isolation of a proteinase with plasminogen-activating activity from Lachesis muta muta (bushmaster) snake venom. Arch. Biochem. Biophys. 378: 131-41. 2000.

SCHÄGGER, H.; VON JAGOW, G. Tricine-sodium dodecyl sulfate-polyacrylamide gel electrophoresis for the separation of proteins in the range from 1 to 100 kDa. Anal. Biochem. 166: 368-379. 1987.

SPEARMAN-KÄRBER, R, Alternative methods of analysis for quantal responses. In: Finney, D (Ed.). Statistical Method in Biological Assay. 2nd.Ed. Charles Griffin, London. 178 pp. 1964.

STOSCHECK, C.M. Quantitation of protein. Methods Enzymol. 182: 50-68. 1990.

TAN, N.H.; SAIFUDDIN, M.N. Comparative study of the oedema-inducing activity of snake venoms. Comp. Biochem. Physiol C. Comp. Pharmacol. Toxicol. 97: 293-296. 1990.

WORLD HEALTH ORGANIZATION. Guidelines for the Management of Snakebites. 2nd Ed. WHO. Pp. 1-141. 2016.

ZANOTTY, Y.; ÁLVAREZ, M.; PERDOMO, L.; SANCHEZ, E.E.; GIRON, M.E.; SUNTRAVAT, M.; MONTERO, Y.; MEDINA, R.; NAVARRETE, L.F.; RODRÍGUEZ-ACOSTA, A. Mutacytin-1, a new C-Type lectin-like protein from the Venezuelan Cuaima (Lachesis muta muta Linnaeus, 1766) (Serpentes: Viperidae) snake venom inducing cardiotoxicity in developing zebrafish (Danio rerio) embryos. Zebrafish. 16: 379–387. 2019.

Cuaima Distribution
Publicado
2021-12-21
Cómo citar
Montero, Y., Girón, M. E., Medina, R., Guerrero, B., Navarrete, L. F., & Rodríguez-Acosta, A. (2021). La serpiente Bushmaster (Cuaima) (Lachesis muta muta) del bosque Neotropical: descripción de varias actividades hemostáticas y biológicas en su veneno. Revista Científica De La Facultad De Ciencias Veterinarias De La Universidad Del Zulia, 32, 1-7. https://doi.org/10.52973/rcfcv-e32070
Sección
Salud Pública Veterinaria