Detección y factores de riesgo asociados a la transmisión de Anaplasma Marginale en rebaños bufalinos lecheros

Detection and risk factors associated with the transmissionof Anaplasma marginale in dairy buffalo herds

  • Juan Pablo Uzcátegui-Varela Universidad Nacional Experimental Sur del Lago“Jesús María Semprum” (UNESUR)
  • Armando de Jesús Briceño-Rangel Universidad Nacional Experimental Sur del Lago“Jesús María Semprum” (UNESUR)
  • María Carolina Rosales Universidad de los Andes
  • Ender Eduardo Márquez Universidad Nacional Experimental Sur del Lago“Jesús María Semprum” (UNESUR)
  • Rosana Uzcátegui-Lara Universidad Nacional Experimental Sur del Lago“Jesús María Semprum” (UNESUR)
Palabras clave: Anaplasma marginale, búfalos, factores de riesgo, PCR

Resumen

Anaplasma marginale es una rickettsia intracelular transmitida por garrapatas e insectos hematófagos que infecta los eritrocitos maduros de rumiantes, considerándose como el hemotrópico de mayor impacto económico en los planteles lecheros del mundo. Los hallazgos de A. marginale en búfalo (Bubalus bubalis) han demostrado que se trata de un importante reservorio del patógeno para los vacunos donde coexisten. Con el propósito de detectar A. marginale en búfalas lactantes así como los factores de riesgo (FR) asociados a su transmisión, se visitaron doce unidades de producción ubicadas en el Eje Panamericano, Sur del Lago de Maracaibo-Venezuela, donde se colectaron 120 muestras de sangre a partir de la vena yugular utilizando tubos al vacío con anticoagulante ácido etilendiamino tetraacético (EDTA). El ADN obtenido fue purificado según el método de la proteinasa K y fenol-cloroformo para identificar mediante la técnica de Reacción en Cadena de la Polimerasa (PCR), un gen especifico (msp1) para A. marginale. Por otra parte, se visualizó la presencia del patógeno a través del extendido sanguíneo bajo microscopio (100X) con tinción de Giemsa y, se aplicó un cuestionario epizootiológico para registrar los elementos epidemiológicos afines con la transmisión del microorganismo rickettsial. La PCR reveló la presencia de un amplicón específico para A. marginale de aproximadamente 400pb en 80% (96/120) del total de búfalas muestreadas; en cambio, por extendido sanguíneo solo el 25,83% (31/120) de los animales se diagnosticaron positivos. Entre los FR estudiados, la presencia de garrapatas (Rhipicephalus microplus) representó el de mayor impacto negativo (Odds ratio (OR)=3,23), mientras que el uso de baños acaricidas resultó una práctica de protección (OR=0,83) ante A. marginale. En conclusión, la PCR demostró ser una herramienta de diagnóstico sensible y especifica en comparación con el frotis sanguíneo para hallar A. marginale. La alta positividad entre los rebaños demandan la adopción de estrategias sanitarias para el control de A. marginale en B. bubalis.

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Biografía del autor/a

Juan Pablo Uzcátegui-Varela, Universidad Nacional Experimental Sur del Lago“Jesús María Semprum” (UNESUR)

Grupo de Investigación en Ciencia Animal y Plantas Tropicales. Universidad Nacional Experimental Sur del Lago“Jesús María Semprum” (UNESUR) Núcleo La Victoria, estado Mérida, 5142, Venezuela.

Armando de Jesús Briceño-Rangel, Universidad Nacional Experimental Sur del Lago“Jesús María Semprum” (UNESUR)

Grupo de Investigación en Ciencia Animal y Plantas Tropicales. Universidad Nacional Experimental Sur del Lago“Jesús María Semprum” (UNESUR) Núcleo La Victoria, estado Mérida, 5142, Venezuela

María Carolina Rosales, Universidad de los Andes

Universidad de los Andes, Facultad de Ciencias, Departamento de Biología, Laboratorio de Genéticay Química Celular (GeQuimCel), Mérida, 5101, Venezuela

Ender Eduardo Márquez, Universidad Nacional Experimental Sur del Lago“Jesús María Semprum” (UNESUR)

Grupo de Investigación en Ciencia Animal y Plantas Tropicales. Universidad Nacional Experimental Sur del Lago“Jesús María Semprum” (UNESUR) Núcleo La Victoria, estado Mérida, 5142, Venezuela

Rosana Uzcátegui-Lara, Universidad Nacional Experimental Sur del Lago“Jesús María Semprum” (UNESUR)

Grupo de Investigación en Ciencia Animal y Plantas Tropicales. Universidad Nacional Experimental Sur del Lago“Jesús María Semprum” (UNESUR) Núcleo La Victoria, estado Mérida, 5142, Venezuela.

Citas

ABDELA, N.; IBRAHIM, N.; BEGNA, F. Prevalence, risk factors and vectors identification of bovine anaplasmosis and babesiosis in and around Jimma town, Southwestern-Ethiopia. Acta Tropica. 177:9-18. 2018.

AÑEZ-ROJAS, N.; ROMERO, O.; VALBUE- NA, H.; CRISANTE, G.; ROJAS, A.; BOLÍVAR, A.; AÑEZ, N. Detección de transmisión transplacentaria de Anaplasma marginale en bovinos asintomáticos. Rev. Científ. FCV-LUZ. XX(4):377–382. 2010.

ASHUMA, S.; SINGLA, L.; KAUR, P.; BAL, M: BATT, B.; JUYAL, P. Prevalence and haemato-biochemical prolife of Anaplasma marginale infection in dairy animals of Punjab (India). Asian Pac. J. Trop. Med. 6(2):139-144. 2013.

AUBRY, P.; GEALE, D. A review of bovine anaplas- mosis. Transbound Emerg. Dis. 58(1): 1-30. 2011.

BARBOSA DA SILVA, J.; VINHOTE, W.; OLIVEIRA, C.; ANDRÉ, M.; MACHADO, R.; DA FONSECA, A.; BARBOSA, J. Molecular and serological prevalence of Anaplasma marginale in water buffaloes in northern Brazil. Ticks Tick Borne Dis. 5(2): 100-104. 2014.

BATISTA, H.; SARTURI, C.; STELMACHTCHUK, F.; RO- CHA, D.; CAROPREZO, A.; GENNARI, S.; MARCILI, A.; NIERI, F.; SOARES, L.; HAMAD, A. Prevalence and risk factors associated with ectoparasite infestation of buffaloes in an Amazonian ecosystem. Parasit. Vectors. 11(1): 1-9. 2018.

BOLÍVAR, A.; PÉREZ, C. Confirmación microbiológica y evaluación hematológica para Anaplasma marginale y Babesia spp. en ganadería bovina de altura en los andes venezolanos. Rev. Med. Vet. 34: 45-53. 2017.

BOLÍVAR, A.; ROJAS, A.; ROSALES, D.; TORRES, Y.; GARCÍA-LUGO, P. Detección de agentes hemotrópicos en una explotación ganadera utilizando PCR y DGGE. Rev. Salud Anim. 36(1): 53-57. 2014.

CORONA, B.; MARTÍNEZ, S. Detección de Anaplasma marginale en bovinos, mediante la amplificación por PCR del gen msp5. Rev. Salud Anim. 33(1):24-31. 2011.

CORONA, B.; OBREGON, D.; MARTÍNEZ, S.; ESPINIZA, I.; HENRIQUE-FONSECA, A.; ROQUE, E. Detección por PCR de Anaplasma marginale en búfalos de la región occidental de Cuba. Rev. Salud Anim. 34(1): 11-18. 2012.

CORRÊA, F.; COSTA, N.; PASSOS, C.; HENRIQUE, A. Ticks on buffaloes (Bubalus bubalis) in the state of Rio de Janeiro, Brazil. Rev. Bras. Parasitol. Vet. Jaboticabal 21(3): 313-314. 2012.

DA SILVA, A.; LOPES, L.; STUMPFS, J.; TONIN, A.; MOURA, L.; NUNES, D. Lice outbreak in buffaloes: evidence of Anaplasma marginale transmission by sucking lice Haematopinus tuberculatus. J. Parasitol. 99(3): 546-547. 2013.

DA SILVA, M. Prevalência e fatores associados à infecção por Anaplasma marginale, Babesia bovis e Babesia bigemina em bovinos da raça crioula lageana. Universidade do Estado de Santa Catarina. Lages-Brasil. Trabalho de graduação. 130 pp. 2017.

EL-HARIRI, M.; ELHELW, R.; HAMZA, D.; SOLIMAN, D. Molecular detection of Anaplasma marginale in the egyptian water buffaloes (Bubalus bubalis) based on major surface protein 1α. J. Egypt. Soc. Parasitol. 47(2): 247-252. 2017.

ERIKS, I.; PALMER, G.; MCGUIRE, T.; BARBET, A. Detection and quantification of Anaplasma marginale in carrier by using a nucleic acid probe. J. Clin. Microb. 27(2):279-284. 1989.

FIGUEIREDO, M.; SILVA, D.; MANRIQUE, W.; GUERRA, R. Infestación y distribución de Haematopinus tuberculatus en bubalinos de São Luís, estado do Maranhão, Brasil. The Biologist. 11(1): 167-172. 2013.

FIGUEROA, V.; CHIEVES, P.; JOHNSON, S.; BUENING, M. Multiplex polymerase chain reaction based assay for the detection of Babesia bigemina, Babesia bovis and Anaplasma marginale DNA in bovine blood. Vet. Parasitol. 50(1-2):69-81. 1993.

GONZÁLEZ, J.; MELÉNDEZ, R. Seroprevalencia de la Tripanosomosis y Anaplasmosis bovina en el municipio Juan José Mora del estado Carabobo, Venezuela, mediante la técnica de ELISA. Rev. Científ. FCV-LUZ. XVII(5): 449-455. 2007.

GREEN, M.; SAMBROOK, J. Quantitation of DNA and RNA by Real-Time Polymerase Chain Reaction. In: Molecular cloning: a laboratory manual. 4th. Ed. Cold Spring Harbor Laboratory Press. Pp. 633-638. 2012.

HOSMER, D.; LEMESHOW, S. Estimation of odds ratios in the presence of interaction. In: Applied logistic regression. 2nd Ed. Wiley Interscience, EUA. Pp. 74-79. 2000.

JACOBO, R.; CIPOLINI, M.; STORANI, C.; MARTÍNEZ,.; MARTÍNEZ, E. Infección con el complejo tristeza del bovino en búfalos. Rev. Med. Vet. 85(5): 203-204. 2004.

JAIMES-DUEÑEZ, J.; TRIANA, O.; MEJÍA, A. Genetic, host and environmental factors associated with a high prevalence of Anaplasma marginale. Ticks Tick Borne Dis. 9(5): 1286-1295. 2018.

KESSLER, R. Considerações sobre a transmissão de Anaplasma marginale. Pesq. Vet. Bras. 21(4): 177-179. 2001.

KHAN, M.; ZAHOOR, A.; JAHANGIR, M.; ASHRAF, M. Prevalence of blood parasites in cattle and buffaloes. Pakistan Vet. J. 24(4):193-195. 2004.

KISPOTTA, S.; ISLAM, F.; HOQUE, F.; RAHMAN, S.; BORMAN, A.; HAQUE, A.; RAHMAN, R. Study of prevalence and associated risk factors of anaplasmosis and theileriasis in cattle. Asian J. Med. Biol. Res. 2(4): 567-576. 2016.

KOCAN, K. Targeting ticks for control of selected hemoparasitic diseases of cattle. Vet. Parasitol. 57(1-3): 121-151. 1995.

KOCAN, K.; STILLER, D.; GOFF, W.; CLAYPOOL, P.; EDWARDS, W.; EWING, S.; MCGUIRE, T.; HAIR, J.; BARRON, S. Development of Anaplasma marginale in male Dermacentor andersoni transferred from parasitemic to susceptible cattle. Amer. J. Vet. Res. 53(4): 499-507. 1992.

MEDINA-NARANJO, V.; REYNA-BELLO, A.; TAVARES- MARQUES, L.; CAMPOS, A.; RON-ROMÁN, J.; MOYANO, J.; JARRÍN-PORRAS, E.; SANDOVAL-MOREJÓN,.; CHÁVEZ-LARREA, M. Diagnóstico de los hemotrópicos Anaplasma marginale, Trypanosoma spp. y Babesia spp. mediante las técnicas de ELISAi y PCR en tres fincas ganaderas de la Provincia de Pastaza, Ecua- dor. Rev. Científ. FCV-LUZ. XXVII(3): 162-171. 2017.

MUÑOZ-GUARNIZO, T.; AYORA-FERNÁNDEZ, P.; LUZURIAGA-NEIRA, A.; CORONA-GONZÁLEZ, B.; MARTÍNEZ-MARRERO, S. Prevalencia de Anaplasma marginale en bovinos de la provincia Zamora Chinchipe, Ecuador. Rev. Salud Anim. 39(1): 68-74. 2017.

NÉO, T. Níveis de infecção de Babesia bovis, B. bigemina e Anaplasma marginale em búfalos criados no estado de São Paulo. Universidade Federal de São Carlos. São Carlos-Brasil. Tese de Grado. 93 pp. 2016.

NOGUERA, E.; ABREU, O.; AZÓCAR, R.; ACOSTA, R. Comportamiento reproductivo de un rebaño mestizo indefinido en El Guayabo, Estado Zulia. Rev. Fac. Agron. (LUZ). 10:537-547. 1993.

OBREGÓN, D.; CORONA, B.; DE LA FUENTE, J.; CA- BEZAS, A.; GONÇALVES, L.; MATOS, C.; ARMAS, Y.; HINOJOSA, Y.; ALFONSO, P.; OLIVEIRA, M.; MACHADO,,R. Molecular evidence of the reservoir competence of water buffalo (Bubalus bubalis) for Anaplasma marginale in Cuba. Vet. Parasitol. Reg. Stud. Rep. 13:180-187. 2018.

OBREGÓN, D.; RODRÍGUEZ, J.; ROQUE, E.; ALEMÁN, Y. Rhipicephalus (Boophilus) microplus (Acari: Ixodidae) en búfalo (Bubalus bubalis), en Cuba. Rev. Salud Anim. 32(2): 132-134. 2010.

REINBOLD, J.; COETZEE, J.; HOLLIS, L.; NICKELL, J.; RIEGEL, C.; CHRISTOPHER, J.; GANTA, R. Comparison of iatrogenic transmission of Anaplasma marginale in Holstein steers via needle and needle-free injection techniques. Am. J. Vet. Res. 71(10): 1178-1188. 2010.

SAETIEW, N.; SIMKING, P.; INPANKAEW, T.; WONGPANIT, K.; KAMYINGKIRD, K.; WONGNAKPHET, S.; STICH, R.; JITTAPALAPONG, S. Prevalence and genetic diversity of Anaplasma marginale infections in water buffaloes in North-east Thailand. J. Trop. Med. Parasitol. 38(1): 9-16. 2015.

SAMBROOK, J.; RUSSELL, D. In vitro amplification of DNA by the polymerase chain reaction. In: Molecular cloning: a laboratory manual. 3rd. Ed. Cold Spring Habor Laboratory Press, New York-EUA. 2344 pp. 2001.

SHARMA, A.; SINGLA, L.; TULI, A.; KAUR, P.; BAL, M. Detection and assessment of risk factors associated with natural concurrent infection of Trypanosoma evansi and Anaplasma marginale in dairy animals by duplex PCR in eastern Punjab. Trop. Anim. Health Prod. 47(1): 252-257. 2015.

SILVA,J.;LOPEZ,C.;SOUZA,M.;GIBSON,A.;VINHOTE,W.; FONSECA, A.; ARAUJO, F.; BARBOSA-NETO, J. Detecção sorológica e molecular de Anaplasma marginale em búfalos na Ilha de Marajó, Pará. Pesq. Vet. Bras. 34(1):11-14. 2014.

SOUZA-AMORIN, L.; ARIAS, A.; SANTOS, F.; SOUZA-CARNEIRO, P.; RÊGO, G. Bovine babesiosis and anaplasmosis complex: diagnosis and evaluation of the risk factors from Bahia, Brazil. Braz. J. Vet. Parasitol. Jaboticabal. 23(3): 328-336. 2014.

STICH, R.; BANTLE, J.A.; KOCAN, K.M.; FEKETE, A. Detection of Anaplasma marginale (Rickettsiales:Anaplasmataceae) in hemolymph of Dermacentor andersoni (Acari:Ixodidae) with the Polymerase Chain Reaction. J. Med. Entomol. 30(4):781-788. 1993.

TAMASAUKAS, R.; AGUDO-CASTELLANOS, L.; SIL- VA-RAVELO, A.; FLORIO-LUIS, J.; VINTIMILLA-TAMASAUKAS, M.; RIVERA-PIRELA, S. Hemoparasitosis en ganadería doble propósito venezolana, diagnóstico y control: una revisión. Agron. Mesoamerican. 21(2): 367-381. 2010.

TORIONI, S.; KNOWLES, D.; MCGUIRE, T.; PALMER, G.; SUÁREZ, C.; MCELWAIN, T. Detection of cattle naturally infected with Anaplasma marginale in a region of endemicity by nested PCR and a competitive enzyme-linked immunosorbent assay using recombinant major surface protein 5. J . Clin. Microbiol. 36 (3):777-782. 1998.

TRAMUTA, C.; LACERENZA, D.; ZOPPI, S.; GORIA, M.; DONDO, A.; FERROGLIO, E.; NEBBIA, P.; ROSATI, S. Development of a set of multiplex standard polymerase chain reaction assays for the identification of infectious agents from aborted bovine clinical samples. J. Vet. Diag. Inv. 23(4): 657-664. 2011.

VENEZIANO, V.; SANTANIELLO, M.; CARBONE, S.; PENNACCHIO, S.; MORGOGLIONE, M.; SCHIOPPI, M.; CONDOLEO, R.; CRINGOLI, G. Lice (Haematopinus tuberculatus) in water buffalo farms from central Itlay. Ital. J. Anim. Sci. 6(Suppl. 2): 926-927. 2007.
Publicado
2019-08-18
Cómo citar
1.
Uzcátegui-Varela JP, Briceño-Rangel A de J, Rosales MC, Márquez EE, Uzcátegui-Lara R. Detección y factores de riesgo asociados a la transmisión de Anaplasma Marginale en rebaños bufalinos lecheros: Detection and risk factors associated with the transmissionof Anaplasma marginale in dairy buffalo herds. Rev. Cient. FCV-LUZ [Internet]. 18 de agosto de 2019 [citado 24 de noviembre de 2024];29(4):265-73. Disponible en: https://produccioncientificaluz.org/index.php/cientifica/article/view/36549