Artículo Original
Resistencia
Bacteriana
Kasmera 51:e5138570,
2023
P-ISSN
0075-5222 E-ISSN 2477-9628
https://doi.org/10.56903/kasmera.5138570
Resistencia antimicrobiana de bacterias
aisladas de secreciones bronquiales en una Unidad de Cuidados Intensivos
Antimicrobial
resistance of bacteria isolated from bronchial secretions in an Intensive Care
Unit
Cuenca-Riascos
Eulalia Betzabé.
https://orcid.org/0000-0002-0853-3536.
Hospital General Reina del Cisne. Laboratorio Clínico. Piñas-El Oro. Ecuador.
E-mail: eulaliacr19@hotmail.com
Riascos-Jaramillo Humberto
Daniel. https://orcid.org/0000-0003-4276-647X.
Universidad Nacional de Loja. Facultad de la Salud Humana. Carrera de
Laboratorio Clínico. Cátedra de Bioestadística y Metodología de la
Investigación. Loja-Loja. Ecuador. E mail: Humberto.riascos@unl.edu.ec
Ortiz–Tejedor Jonnathan Gerardo (Autor de correspondencia). https://orcid.org/0000-0001-6770-2144.
Universidad Católica de Cuenca. Facultad de Bioquímica y Farmacia. Unidad
Académica de Salud y Bienestar. Cátedra de Inmunología. Cátedra de
Bacteriología y Biología Molecular. Cuenca-Azuay. Ecuador. Unidad Académica de
Posgrado. Maestría en Diagnóstico de Laboratorio Clínico y Molecular.
Cuenca-Azuay. Ecuador. Dirección Postal: Universidad Católica de Cuenca.
Facultad de Bioquímica y Farmacia. Unidad Académica de Salud y Bienestar.
Cátedra de Bacteriología. Av. De las Américas y Humboldt. Poliforo
de la Universidad Católica de Cuenca. Oficina 103 de Posgrados. Universidad
Católica de Cuenca. Cuenca-Azuay. Ecuador. Teléfono: 0992766351. E-mail: jonnathan.ortiz@ucacue.edu.ec
Resumen
La aparición y propagación de bacterias multirresistentes es un desafío para sistemas públicos de salud. Para analizar la
susceptibilidad antimicrobiana, categorizar la multirresistencia y producción
de BLEE, se recopiló información de aislamientos bacterianos de secreción
bronquial de pacientes de la UCI, registrada en el Hospital
General de la Ciudad de Piñas-Ecuador (2020-2021). La resistencia de BGN osciló entre 62-100%, para cefalosporinas de III y IV generación,
aztreonam y amoxicilina/ácido clavulánico. Para piperacilina/tazobactam fue de 75% en P. aeruginosa y 62,5% en E. coli. A.
baumannii fue 100% sensible a carbapenémicos, para E. coli la resistencia
fue de 12,5%. P. aeruginosa y K. pneumoniae mostraron valores de
34% para imipenem y meropenem. La resistencia a ciprofloxacina fue superior al
70%, excepto para A. baumannii (33,3%). Para aminoglucósidos osciló
entre 33-75%, excepto para amikacina en E. coli (12,5%). A
baumannii presentó el patrón MDR (100%), K. pneumoniae (MDR: 58,6%; XDR:
34,5%; PDR: 6,9%;) y P.
aeruginosa (MDR: 53,6%; XDR: 39,3%; PDR: 7,1%;)
mostraron los tres fenotipos de resistencia. 25% de aislamientos produjeron
BLEE, de ellos. 87,75%
correspondieron a E. coli y 34,5% a K. pneumoniae. La multirresistencia y la producción de BLEE en BGN son problemas de gran magnitud en hospitales ecuatorianos.
Palabras
claves: unidad de cuidados intensivos, bacterias Gram negativas,
farmacorresistencia microbiana.
Abstract
The appearance and spread of multiresistant
bacteria are a challenge for public health systems. To analyze
antimicrobial susceptibility, categorize multi-resistance and ESBL production,
information was collected on bacterial isolates from bronchial secretions of
ICU patients, registered at the General Hospital of the City of Piñas-Ecuador (2020-2021). The resistance of the GNB ranged
between 62-100%, for III and IV generation cephalosporins, aztreonam and
amoxicillin/clavulanic acid. For piperacillin/tazobactam it was 75% in P.
aeruginosa and 62.5% in E. coli. A. baumannii was 100% sensitive to
carbapenems, for E. coli the resistance was 12.5%. P. aeruginosa
and K. pneumoniae showed values higher than 34% for imipenem and
meropenem. Ciprofloxacin resistance was greater than 70%, except for A.
baumannii (33.3%). For aminoglycosides it ranged between 33-75%, except for
amikacin in E. coli (12.5%). A baumannii presented the MDR
pattern (100%), K. pneumoniae (MDR: 58.6%; XDR: 34.5%; PDR: 6.9%;) and P.
aeruginosa (MDR:53.6%; XDR: 39.3%; PDR: 7.1%;) showed the three resistance
phenotypes. 25% of the isolates produced ESBL, of them. 87.75% corresponded to E.
coli and 34.5% to K. pneumoniae. Multiresistance
and ESBL production in GNB are problems of great magnitude in Ecuadorian
hospitals.
Keywords: intensive
care unit, Gram- negative bacteria; microbial drug resistance.
Recibido: 14/08/2022 | Aceptado: 14/09/2022 |
Publicado: 07/04/2023
Como Citar: Cuenca-Riascos EB,
Riascos-Jaramillo HD, Ortiz–Tejedor JG. Resistencia antimicrobiana de bacterias
aisladas de secreciones bronquiales en una Unidad de Cuidados Intensivos. Kasmera. 2023;51:e51038570.
doi: 10.56903/kasmera.5138570
Introducción
La
resistencia bacteriana es la capacidad de las bacterias para soportar los
efectos de los antibióticos destinados a inactivarlas (1-3). Existen diferentes mecanismos por los cuales las
bacterias adquieren resistencia: inactivación enzimática, modificación del
sitio blanco, alteración de la permeabilidad y bombas de eflujo (3-5).
Los mecanismos antes mencionados, minimizan o interrumpen la acción
antimicrobiana con la consecuente generación de resistencia (3).
La aparición y propagación de patógenos
farmacorresistentes que han adquirido nuevos mecanismos de resistencia,
compromete la capacidad de los sistemas de salud para proveer la farmacoterapia
adecuada, aumentan la carga económica de la
atención médica, prolongan la estancia hospitalaria e incrementan la morbi-mortalidad. Especial atención merece
la rápida propagación mundial de bacterias multirresistentes y panresistentes que provocan infecciones que no responden a
la terapia antimicrobiana (1).
Dentro de estos microorganismos se encuentra el
grupo denominado “ESKAPE” acrónimo para las bacterias Enterococcus faecium
(E. faecium), Staphylococcus aureus (S. aureus), Klebsiella pneumoniae (K.
pneumoniae), Acinetobacter baumannii (A. baumannii), Pseudomonas aeruginosa (P.
aeruginosa) y Enterobacter spp., las cuales fueron publicadas por la
OMS en el año 2017 como prioridad en la investigación de nuevos fármacos (6).
Frente a la necesidad de concretar acciones
tendentes a mejorar el uso de antimicrobianos y ayudar en la prevención de la
diseminación de patógenos farmacorresistentes, la Red Latinoamericana de
Vigilancia de la Resistencia a los Antimicrobianos (ReLAVRA),
en el consenso del año 2019, estableció los criterios regionales para detectar
y reportar fenotipos adquiridos de resistencia múltiple a antibióticos
(multirresistencia, resistencia extendida y panresistencia);
tomando como referencia especies de la familia Enterobacteriaceae y
bacilos Gram negativos no fermentadores (BGNNF) (7).
Las infecciones causadas por
bacterias multirresistentes se han convertido en la principal causa del aumento
de la morbi-mortalidad en pacientes recluidos en
Unidades de Cuidados Intensivos (UCIs). De hecho, la tasa de mortalidad aumenta más
del doble entre los pacientes infectados en comparación con los no infectados (8). Además, la adquisición y transmisión de infecciones en la UCIs se asocia con múltiples factores, incluyendo, edad
avanzada, severidad de la enfermedad, presencia de dispositivos invasivos,
exposición previa a antibióticos, inmunosupresión, presencia de comorbilidad,
estancia prolongada y presión selectiva por el uso de antibióticos (6,7,9).
Los
betalactámicos son los principales antibióticos prescritos en las UCIs de todo el mundo debido a su eficacia, amplio espectro
y baja toxicidad. Sin embargo, el uso irracional de estos fármacos ha resultado
en el desarrollo y la propagación de bacterias resistentes a múltiples
antimicrobianos (10).
Uno
de los mecanismos de mayor impacto en el desarrollo de multirresistencia en
bacilos Gram negativos (BGN) es la producción de Betalactamasas de
Espectro Extendido (BLEE). Estas enzimas generan resistencia a la mayoría de
los antibióticos B-lactámicos, incluyendo penicilinas, cefalosporinas de I, II,
III, IV generación y monobactámicos; sin embargo, son sensibles a cefamicinas,
y carbapenémicos e inhibidas por moléculas como el ácido clavulánico. En cuanto
a cefamicinas o cefalosporinas de IV generación, a pesar que estos
microorganismos suelen ser susceptibles in vitro, no son eficaces en el
tratamiento del paciente. Las cepas BLEE positivas a menudo cuentan con otros
genes que codifican resistencia a aminoglucósidos, tetraciclinas,
fluoroquinolonas y cotrimoxazol (11).
En vista de la importancia del ambiente hospitalario
como fuente de patógenos resistente a drogas antimicrobianas, la presente
investigación tiene como objetivos determinar los patrones de susceptibilidad antimicrobiana,
establecer las categorías de multirresistencia y detectar la producción de
BLEE, en aislamientos obtenidos de muestras de secreciones bronquiales de
pacientes recluidos en la UCIs del Hospital General
de la Ciudad de Piñas-Ecuador, durante el período 2020-2021.
Métodos
Tipo y diseño de la Investigación: la investigación fue de
tipo documental, retrospectiva de corte transversal-descriptivo.
Población y muestra: la población y muestra
para la presente investigación estuvo conformada por los 116 cultivos de
muestras clínicas obtenidas de secreciones bronquiales, provenientes de
pacientes recluidos en la UCI de un centro hospitalario. La información
evaluada se recopiló de los registros del Departamento del Laboratorio del Área
de Microbiología del Hospital General de la Ciudad de Piñas- Ecuador, durante
el período 2020-2021.
Metodología:
Aislamiento e identificación
bacteriana: las muestras se inocularon en medios de cultivo estándar y se incubaron
en condiciones apropiadas para el aislamiento microbiano. La identificación
bacteriana se realizó de manera fenotípica mediante la utilización de las
siguientes pruebas bioquímicas: ureasa, ácido sulfhídrico-indol-movilidad (SIM), triple azúcar hierro (TSI), descarboxilación de
lisina y citrato.
Susceptibilidad antimicrobiana: los patrones de susceptibilidad
antimicrobiana de las bacterias aisladas se determinaron por la técnica de
difusión del disco en agar, siguiendo los lineamientos establecidos por Instituto para la Estandarización de Laboratorios Clínicos
2019 (12).
Además, para la ejecución e interpretación de resultados de los antibióticos de
colistina y tigeciclina en enterobacterias se rigió en base a la literatura
descrita por Barberán y Ayala (13,14).
Agregando que por disponibilidad de recursos se
utilizó los discos de colistina y tigeciclina ya que no se dispone de técnicas
avanzadas como concentración inhibitoria mínima.
Producción de BLEE: se empleó en método de sinergia del doble
disco, el cual se describe brevemente. Una vez obtenida la suspensión bacteriana e inoculada en agar Mueller Hinton se procedió a colocar discos de
ceftazidima (30μg), cefotaxima (30μg), cefepime (30μg), aztreonam (30μg) (centro a centro) de un disco con
amoxicilina/ácido clavulánico (20/10μg). La presencia de BLEE se
evidencia por el efecto sinérgico del inhibidor, mediante la ampliación de halo
de inhibición en uno o varios de los β-lactámicos (12).
Categorización de la resistencia: se realizó mediante los lineamientos
establecidos por la Red Nacional de Vigilancia de la Resistencia a los
Antimicrobianos (ReLAVRA),
en los cuales se estandarizan los criterios fenotipos para definir las
diferentes categorías de resistencia que un microorganismo puede expresar, con
base a una lista de antibióticos comunes y en el uso de las mismas metodologías
y puntos de corte, señalados por el Consenso Latinoamericano del año 2019. Se
definen tres categorías generales, denominadas multirresistencia (MDR, del
inglés multidrug-resistance), resistencia extendida
(XDR, del inglés extensively drug-resistance)
y panresistencia (PDR, del inglés pandrug-resistance),
establecidas tomando como referencia tres microorganismos de gran impacto
hospitalario, a saber, K. pneumoniae, P. aeruginosa y Acinetobacter spp.
(7).
Análisis
estadístico: los
resultados se procesaron utilizando el paquete estadístico Statistical
Package for Social Sciences (SPSS) versión 21. Los porcentajes de resistencia
para cada antibiótico, la frecuencia de fenotipos de resistencia y producción
de BLEE para cada microorganismo fueron analizados aplicando Chi-cuadrado con
un nivel de significancia del 5%. Los datos obtenidos fueron expresados en
números y porcentajes aplicando estadística descriptiva y organizados en
tablas.
Aspectos bioéticos: la presente investigación se apega a los principios éticos planteados en
la Declaración de Helsinkin de la Asociación Médica
Mundial (AMM) y en la Declaración de la AMM de Taiwán 2016 (15,16); por lo cual, se respetó la confidencialidad de la información y
se aseguró que los datos obtenidos no
se utilizaran para otros propósitos.
Este estudio recibió la aprobación del comité de ética del Hospital General de
Piñas-Ecuador, dado que al ser este proyecto una situación excepcional de
investigación retrospectiva, no se requirió el consentimiento informado de los
pacientes. Cabe destacar que el protocolo de la presente investigación fue
evaluado y aprobado por el director Médico
del Hospital General de Piñas, para la utilización de los registros ingresados en la base de datos del
Laboratorio Clínico, durante el periodo comprendido entre julio 2020-septiembre
2021.
Resultados
En este estudio se analizaron
los resultados de 116 cultivos bacteriológicos de muestras de secreciones
bronquiales, provenientes de pacientes recluidos en la UCI del Hospital General
de la Ciudad de Piñas-Ecuador, durante el período 2020-2021. De estos especímenes 69
(59,5%) correspondieron a individuos del sexo masculino; mientras que, 47
(40,5%) procedían de pacientes del sexo femenino. No hubo diferencia
significativa en relación con la variable sexo (x2=0,45, p=0,83).
En cuanto a la distribución de las muestras según el grupo etario, 57
(49,1%) provenían de adulto mayor (≥65 años), 36,2% de adultos entre
30-64 años y, por último, 14,7% de jóvenes entre 18-29 años, no existe
diferencia significativa con la variable edad (x2= 9,35 p>0,31).
La frecuencia de
cultivos positivos en las muestras de secreciones bronquiales fue de 58,6% (68 de116); mientras que, en
41,4% (48 de 116) de los especímenes no se detectó
crecimiento microbiano.
En la Tabla 1 se observa la
distribución de las especies bacterianas recuperadas de las muestras de
secreciones bronquiales. Como puede observarse, K. pneumoniae y P.
aeruginosa representaron más del 80% de los aislamientos; mientras que, E.
coli y A. baumannii alcanzaron el 16%.
Tabla 1. Frecuencia de
aislamientos microbianos en muestras de secreciones bronquiales. UCI Hospital
General de Piña-Ecuador. Julio 2020-septiembre 2021
Microorganismo |
Número |
% |
K. pneumoniae |
29 |
42,6 |
P. aeruginosa |
28 |
41,2 |
E. coli |
8 |
11,8 |
A. baumannii |
3 |
4,4 |
Total |
68 |
100 |
Los
patrones de resistencia de las enterobacterias aisladas se detallan en la Tabla
2;
como puede apreciar, las cepas de E. coli presentaron una elevada
resistencia a cefalosporinas de III y IV generación, aztreonam, ciprofloxacina,
β lactámicos con inhibidores de β lactamasas y
trimetoprim/sulfametoxazol. En cuanto al comportamiento frente a los
carbapenemes la resistencia fue relativamente baja; mientras que, para los
aminoglucósidos osciló entre 12-50%. Todas las cepas fueron sensibles a
colistina y tigeciclina.
La resistencia de las cepas de K. pneumoniae
superó el 50% para la mayoría de los antimicrobianos probados. En cuanto a los
carbapenémicos y piperacilina/tazobactam osciló entre 31-44,8%. Se observó una
alta sensibilidad a colistin, puesto que, solo dos
aislados resultaron resistentes a este antibiótico (Tabla
2).
Tabla
2. Resistencia antimicrobiana de K. pneumoniae y E. coli
aisladas de secreciones bronquiales. UCI Hospital General de Piña-Ecuador.
Julio 2020-septiembre 2021
Antibiótico |
K. pneumoniae |
E. coli |
|||
Número |
% R |
Número |
% R |
||
Ceftriaxona |
22 |
75,9 |
8 |
100 |
|
Ceftazidima |
21 |
72,4 |
7 |
87,5 |
|
Cefotaxima |
21 |
72,4 |
7 |
87,5 |
|
Cefepime |
18 |
62,1 |
7 |
87,5 |
|
Amoxicilina/Ácido
Clavulánico |
29 |
100 |
8 |
100 |
|
Piperacilina/Tazobactam |
13 |
44,8 |
5 |
62,5 |
|
Meropenem |
10 |
34,5 |
1 |
12,5 |
|
Imipenem |
9 |
31,0 |
1 |
12,5 |
|
Aztreonam |
18 |
62,1 |
7 |
87,5 |
|
Gentamicina |
15 |
51,7 |
4 |
50 |
|
Amikacina |
16 |
55,2 |
1 |
12,5 |
|
Ciprofloxacina |
21 |
72,4 |
7 |
87,5 |
|
Fosfomicina |
16 |
55,2 |
3 |
37,5 |
|
Colistin |
2 |
6,9 |
0 |
0 |
|
29 |
100 |
8 |
100 |
||
Tigeciclina |
9 |
31,0 |
0 |
0 |
|
Las cepas de P.
aeruginosa mostraron valores de resistencia superiores al 70% para agentes
antimicrobianos pertenecientes a los siguientes grupos: cefalosporinas de III y
IV generación, monobactam, fluoroquinolonas, β lactámicos con inhibidores
de B-lactamasas y aminoglicósidos. Sólo para los carbapenemes, imipenem y
meropenem, esta bacteria presentó un porcentaje de resistencia inferior al 50%
(Tabla 3).
Tabla
3. Resistencia antimicrobiana de P. aeruginosa y A. baumannii
aisladas de secreciones bronquiales. UCI Hospital General de Piña-Ecuador.
Julio 2020-septiembre 2021
Antibiótico |
P. aeruginosa |
A. baumannii |
||
Número |
% R |
Número |
% R |
|
Ceftriaxona |
|
3 |
100 |
|
Ceftazidima |
27 |
96,4 |
3 |
100 |
Cefotaxima |
|
|
3 |
100 |
Cefepime |
27 |
96,4 |
3 |
100 |
Piperacilina/Tazobactam |
21 |
75 |
1 |
33,3 |
Meropenem |
13 |
46,4 |
0 |
0 |
Imipenem |
13 |
46,4 |
0 |
0 |
Aztreonam |
24 |
85,7 |
- |
- |
Gentamicina |
20 |
71,4 |
1 |
33,3 |
Amikacina |
21 |
75 |
1 |
33,3 |
Ciprofloxacina |
23 |
82,1 |
1 |
33,3 |
Trimetoprim/sulfametoxazol |
|
3 |
100 |
La susceptibilidad antimicrobiana de las cepas de A. baumannii
indica una resistencia de 100% para cefalosporinas de III y IV generación, y trimetoprim/sulfametoxazol. La resistencia frente a piperacilina/tazobactam,
aminoglucósidos y ciprofloxacina fue ligeramente superior al 30%. Todas las cepas fueron
sensibles a imipenem y meropenem (Tabla 3).
En
la Tabla 4 se muestran los niveles de resistencia y la producción de β
lactamasas de espectro extendido (BLEE) de los microorganismos positivos en
este estudio, la categoría MDR fue el fenotipo de resistencia más frecuente en
las cepas de K. pneumoniae y P. aeruginosa y el único obtenido en
los aislados de A. baumannii. La categoría PDR se obtuvo en 4 cepas, 2 K.
pneumoniae y 2 P aeruginosa, existiendo diferencia significativa (x2=
70,42; p=0,000) entre las bacterias y los niveles de resistencia.
Tabla
4. Niveles de resistencia y producción de BLEE en cepas aisladas de
secreciones bronquiales. UCI Hospital General de Piña-Ecuador. Julio
2020-septiembre 2021.
Microorganismo |
Niveles de
Resistencia [n/N (%)] |
Producción de BLEE (n/N%) |
||
MDR |
XDR |
PDR |
||
K. pneumoniae |
17/29(58,6) |
10/29(34,5) |
2/29(6,9) |
10/29(34,5) |
E. coli |
0/8 |
0/8 |
0/8 |
7/8 (87,5) |
P. aeruginosa |
15/28(53,6) |
11/28(39,3) |
2/28(7,1) |
- |
A. baumannii |
3/3 (100) |
0/3 |
0/3 |
- |
Total |
35/68(51,5%) |
21/68(31%) |
4/68(6%) |
17/37(46%) |
n:
cepas positivas; N: total de cepas; MDR: multirresistencia; XDR: resistencia
extendida; PDR: panresistencia
La presencia de BLEE se
evidenció en un elevado porcentaje de las cepas de E. coli; mientras
que, la producción de estas enzimas fue ligeramente superior al 30% en los aislamientos
pertenecientes a la especie K. pneumoniae. (Tabla
4).
Discusión
A nivel mundial las
bacterias Gram negativas, principalmente las enterobacterias y los BGNNF, se
han convertido en una de las principales amenazas a la salud pública global (1,17).
En
concordancia con los resultados de esta investigación, diversos autores (18-20) reportan a las
Enterobacterias y los BGNNF como los principales
agentes etiológicos de infecciones adquiridas en UCI. Otros
autores (21-24), coinciden en señalar a las Enterobacterias
dentro de las principales causantes de procesos infecciosos; aunque, también
informan Gram positivos como S. aureus y especies de hongos (Candida
spp) como causa de enfermedades infecciosas en pacientes críticos.
Las
infecciones causadas por Bacilos Gram negativos multirresistentes (BGNMR),
particularmente cuando afectan al enfermo crítico, se caracterizan por
presentar una elevada morbimortalidad. Estudios epidemiológicos han demostrado
la relación directa entre el uso de antimicrobianos y el desarrollo de
resistencia en BGN. De hecho, en caso de cuadros infecciosos causados por Pseudomonas
y Acinetobacter spp, por cada día de exposición adicional a antibióticos
B-lactámicos antipseudomonales, el riesgo de aparición
de resistencia incrementa desde un 2% para meropenem hasta un 8% para cefepime
o piperacilina/tazobactam (3).
El análisis de los resultados de este estudio
evidenció que los BGN aislados presentaron una alta resistencia, que oscila
entre 62-100%, para cefalosporinas de III y IV generación, aztreonam y
amoxicilina/ácido clavulánico. Para piperacilina/tazobactam, la mayor
resistencia correspondió a las especies de P. aeruginosa (75%) y E. coli (62,5%). Todos los aislamientos de A.
baumannii fueron sensibles a carbapenemes; mientras que, las cepas E. coli presentaron
porcentajes de resistencia relativamente bajos. Sólo las especies de P.
aeruginosa y K. pneumoniae mostraron valores superiores a 34% para imipenem
y meropenem.
En relación con el comportamiento de los BGN recuperados
frente a las fluoroquinolonas, se evidenció una alta resistencia a
ciprofloxacina, superior al 70%, excepto para A. baumannii (33,3%). Para
los aminoglucósidos, gentamicina y amikacina, la resistencia osciló entre
33-75% para las especies de K. pneumoniae, P aeruginosa y A.
baumannii; no así, para E. coli, ya que, mientras la mitad de las
cepas resultaron resistentes a gentamicina; sólo 12,5 % no mostraron sensibilidad
a amikacina.
Estos resultados coinciden con los
comunicados por Uc-Cachón (20), en México, quienes, en un estudio
realizados en una UCI, indican que los BGN presentaron altas tasas de resistencia
para cefalosporinas de III y IV generación, trimetoprim/sulfametoxazol y aztreonam (55-96%). La resistencia
promedio para piperacilina/tazobactam fue de 36%. Los aislamientos exhibieron
una resistencia a aminoglucósidos que osciló entre 46-84%, excepto para
amikacina en las enterobacterias cuyo valor no superó el 14%. Sin embargo,
difieren para los carbapenemes;
puesto que, las enterobacterias mostraron una baja resistencia (<10%);
mientras que, para BGNNF fue superior al 56%.
Los perfiles de susceptibilidad antimicrobiana para BGN presentados por Ibrahim
ME (25), en Arabia Saudita,
coinciden en cuanto a la resistencia para cefalosporinas de tercera generación,
aztreonam, trimetoprim/sulfametoxazol
y ciprofloxacina. Sin embargo, los resultados difieren en relación con A.
baumannii frente a carbapenemes, puesto que, la resistencia superó el 96%;
mientras que, todas las cepas de este estudio fueron sensibles. De igual modo, P.
aeruginosa presentó una buena actividad frente aminoglucósidos, en
contraste con los hallazgos de esta investigación.
En analogía con los
resultados de esta investigación, el análisis de la farmacorresistencia de
cepas de BGN en una UCIs, por Alebel
y col (19), en Etiopia, indica
que estos aislamientos poseen altos niveles de resistencia para cefalosporinas,
amoxicilina/ácido clavulánico, gentamicina y trimetoprim/sulfametoxazol;
mientras que, para los carbapenemes se observó una resistencia moderada, entre
8-31%.
Parajauli y col (10), comunicaron
una alta resistencia en cepas de Acinetobacter spp y P. aeruginosa para
carbapenemes, cefalosporinas,
aminoglucósidos y B-lactámicos con inhibidores de B-lactamasas. Por otra parte,
la farmacorresistencia de las cepas de
enterobacterias, incluyendo E. coli y Klebsiella spp, a cefalosporinas,
fluoroquinolonas y aminoglucósidos fue muy elevada; no así, para
carbapenémicos, puesto que, más de la mitad de los aislamientos fueron
sensibles.
La
resistencia a múltiples fármacos en cepas de Acinetobacter spp y P.
aeruginosa se ha atribuido a la persistencia y multiplicación en el entorno
hospitalario y a la adquisición de genes de resistencia. La resistencia
intrínseca se debe a la disminución de la permeabilidad a los antimicrobianos
(asociada con la resistencia a imipenem y a una susceptibilidad disminuida a meropenem), ocasionada por la expresión reducida de porinas de
membrana externa y sistemas activos de bomba de eflujo. Por otra parte, estas
bacterias poseen islas de resistencia que incluyen clústeres de genes de
resistencia a antibióticos y metales pesados; como consecuencia, han surgido
numerosos aislados multirresistentes con expresión de BLEE (26).
K.
pneumoniae es un bacteria
intrínsecamente virulenta y capaz de provocar cuadros infecciosos invasivos. Se
destaca por su rápida acumulación y diseminación de determinantes de
resistencia a múltiples drogas; en particular, un rango extensivo y versátil de
enzimas BLEE. Las cepas resistentes de K.
pneumoniae se han hecho cada vez más prevalentes y, colectivamente, las
enterobacterias resistentes a carbapenémicos están cada vez más implicadas en
brotes mundiales de infección esporádicos (26).
Los aislamientos de E. coli no
presentaron resistencia a colistina y, sólo dos aislados (6,9%) de K.
pneumoniae lo reflejaron. Cabe destacar que, el método de difusión en disco
no es una técnica estandarizada para evaluar la susceptibilidad a colistina;
sin embargo, en este estudio permitió detectar que no existió resistencia de
alto nivel frente a este agente antimicrobiano. El incremento de las infecciones intrahospitalarias por BGNMR, ha
conducido al resurgimiento del uso de colistina; sin embargo, dada su elevada
toxicidad, su prescripción debe reservarse sólo para pacientes con infecciones
complicadas cuando no es posible otra opción terapéutica.
La
multidrogorresistencia en BGN es un problema de gran impacto a nivel
hospitalario, en particular en las UCI y las salas de cirugía. La mayoría de
los BGN recuperados en esta investigación presentaron algún fenotipo de
resistencia (88,5%); la mayor proporción correspondió a la categoría MDR
(51,5%), seguida de XDR (31%) y PDR (6%). En concreto, todos los aislamientos de A baumannii
presentaron el patrón MDR; mientras que, las cepas de K. pneumoniae (MDR:
58,6%; XDR: 34,5%; PDR: 6,9%;) y P. aeruginosa (MDR:
53,6%; XDR: 39,3%; PDR: 7,1%;) presentaron los tres
niveles de resistencia.
Investigaciones
realizadas por Moolchandani y col (27); Uc-Cachón (20); Basak y col (28) e Ibrahim ME (25), indican que entre 45-71% de los aislamientos de BGN
obtenidos de pacientes críticos presentan múltiple resistencia a antibióticos.
Por otra parte, en países desarrollados, este problema es de gran
trascendencia; así, durante el año 2013, en Estados Unidos, el 63% de los
aislamientos de A. baumannii presentaron un perfil de fármaco
resistencia (18).
En
esta investigación sólo las especies de E.
coli (87,75%) y K. pneumoniae (34,5%) fueron productoras de BLEE. Otros autores concuerdan
en señalar a estos dos miembros de la familia Enterobacteriaceae como
los principales productores de BLEE en aislamientos clínicos; no obstante,
existe discrepancia en la proporción de BLEE en comparación con los hallazgos
de este estudio. Así, Uc-Cachón y col (20)
y Fernández y col (29), obtuvieron una proporción
similar de cepas productora de BLEE en E. coli; sin embargo, para K.
pneumoniae informaron porcentajes de recuperación muy diferentes (75%).
Por otra parte, Aly
y Balkhy (30) publicaron que la
producción de BLEE en cepas de E. coli fue de 34%; para Klebsiella spp. 13,7% y finalmente P.
aeruginosa 7,4%. Por otra parte, Alebel y col (19), informaron que las cepas E. cloacae y P. aeruginosa fueron los principales productores de BLEE junto con K. pneumoniae y
E. coli.
En
conclusión, los resultados de esta investigación muestran el importante papel
desempeñado por los BGN, en particular las enterobacterias y los BGNNF, como
productores de infecciones en pacientes recluidos en UCIs.
Por otra parte, los elevados niveles de multirresistencia y la producción de BLEE, demuestra que el fenómeno de la fármacorresistencia
es un problema de gran magnitud en los hospitales ecuatorianos.
Se recomienda la
implementación continua de estrategias de prevención y control de infecciones,
a fin de evitar o desacelerar la aparición y propagación de bacterias
multirresistentes en ambientes hospitalarios; tales como, limpieza y desinfección
ambiental, higiene de manos, uso correcto de guantes, uso adecuado de los
antibióticos. Además, se requiere la realización de pruebas rutinarias de
susceptibilidad a los antimicrobianos a fin de monitorear la aparición de
resistencia
Conflicto de Relaciones y Actividades
Los autores declaran que la investigación se realizó en ausencia
de relaciones comerciales o financieras que pudieran interpretarse como un
posible conflicto de relaciones y actividades.
Agradecimientos
A la Interna de Medicina Erika Romina
Cuenca Riascos por su apoyo y colaboración en la ejecución y redacción de este
trabajo.
Financiamiento
Esta investigación no recibió financiamiento de fondos públicos
o privados, la misma fue autofinanciada por los autores.
Referencias Bibliográficas
1.
Organización
Mundial de la Salud. Resistencia a los antimicrobianos [Internet]. 2020.
Disponible en: https://www.who.int/es/news-room/fact-sheets/detail/antimicrobial-resistance
2. Hooper DC. Resistencia bacteriana a antimicrobianos. En: Jameson JL, Fauci AS, Kasper DL, Hauser SL, Longo DL, Loscalzo J, editores. Harrison Principios
de Medicina Interna, 20e [Internet]. New York,
NY: McGraw-Hill Education; 2018. Disponible en: http://accessmedicina.mhmedical.com/content.aspx?aid=1161985248
3.
Giono-Cerezo S,
Santos-Preciado JI, Morfín-Otero M del R, Torres-López FJ, Alcántar-Curiel MD.
Resistencia antimicrobiana. Importancia y esfuerzos por contenerla. Gac México [Internet]. 2020;156(2):171-8. Disponible en: https://www.gacetamedicademexico.com/frame_eng.php?id=405 DOI: 10.24875/gmm.20005624 PMID 32285851
4.
Serra-Valdés MA.
La resistencia microbiana en el contexto actual y la importancia del
conocimiento y aplicación en la política antimicrobiana. Rev Habanera Ciencias Medicas [Internet]. 2017;16(3):402-19. Disponible en: https://www.medigraphic.com/cgi-bin/new/resumen.cgi?IDARTICULO=77224
5.
Reygaert WC. An overview of the antimicrobial resistance mechanisms of bacteria.
AIMS
Microbiol [Internet]. 2018;4(3):482-501. Disponible
en: https://www.aimspress.com/article/doi/10.3934/microbiol.2018.3.482 DOI: 10.3934/microbiol.2018.3.482 PMID 31294229 PMCID PMC6604941
6.
Santos Zonta F do N, Roque M da S, Soares da Silva RG,
Ritter AG, Jacobsen FT. Colonización por ESKAPES y
características clínicas de pacientes en estado crítico. Enfermería Glob [Internet]. 2020;19(59):214-54. Disponible en: https://scielo.isciii.es/scielo.php?script=sci_arttext&pid=S1695-61412020000300214 DOI: 10.6018/eglobal.406691
7.
Jiménez Pearson MA, Galas M, Corso A, Hormazábal JC,
Duarte Valderrama C, Salgado Marcano N, et al. Consenso latinoamericano para
definir, categorizar y notificar patógenos multirresistentes, con resistencia
extendida o panresistentes. Rev Panam Salud
Publica [Internet]. 2019;43:e65. Disponible en: https://iris.paho.org/handle/10665.2/51470 DOI: 10.26633/RPSP.2019.65 PMID 31456820 PMCID PMC6705331
8.
Garnacho-Montero J, Amaya-Villar R. El problema de la multi-resistencia
en bacilos gram-negativos en las unidades de cuidados
intensivos: estrategias de tratamiento y prevención. Med
Intensiva [Internet]. 2022;46(6):326-35. Disponible en: https://www.medintensiva.org/es-linkresolver-el-problema-multi-resistencia-bacilos-gram-negativos-S0210569121002837 DOI: 10.1016/j.medin.2021.12.002
9.
Ministerio de Salud Pública. Dirección Nacional de Vigilancia
Epidemiológica. Plan Nacional para la prevención y control de la resistencia
antimicrobiana [Internet]. 2019. Disponible en: https://www.salud.gob.ec/wp-content/uploads/2019/10/Plan-Nacional-para-la-prevenci%C3%B3n-y-control-de-la-resistencia-antimicrobiana_2019_compressed.pdf
10. Parajuli NP, Acharya SP, Mishra SK, Parajuli
K, Rijal BP, Pokhrel BM. High burden of antimicrobial resistance among gram negative bacteria
causing healthcare associated infections in a critical care unit of Nepal. Antimicrob Resist Infect Control [Internet]. 2017;6(1):67.
Disponible en: https://doi.org/10.1186/s13756-017-0222-z DOI: 10.1186/s13756-017-0222-z PMID 28638594 PMCID PMC5472869
11.
Urquizo Ayala G, Jackeline Arce Chuquimia D, Gladys Alanoca Mamani D. Resistencia Bacteriana por Beta Lactamasas de
Espectro Extendido: Un Problema Creciente. Rev Med La Paz [Internet]. 2018;24(2):24. Disponible en: https://pesquisa.bvsalud.org/portal/resource/pt/biblio-987871
12.
Clinical and Laboratory Standards Institute. CLSI.
Performance Standards for Antimicrobial Susceptibility Testing M100-S29. Wayne PA: Clinical and Laboratory Standards Institute; 2019.
13.
Barberán J, Salso S, Alhambra A. Tigecycline: 10 years
of history and in full force. Rev Esp Quimioter
[Internet]. 2015;28(2):61-78. Disponible en: https://seq.es/wp-content/uploads/2015/02/seq_0214-3429_28_2_barberan.pdf PMID 25904513
14.
Ayala-Valdivia MA, Cespedes-Bustamante CF,
Navia-Calvetty PE, Zamora de Corso JI, Zamorano-Vilar
LV. Protocolo e Interpretación de los
nuevos patrones del Antibiograma [Internet]. Disponible en: https://www.yumpu.com/es/document/read/62281991/interpretacion-de-nuevos-patrones-del-antibiograma
15.
Asociación Médica Mundial. Declaración de Helsinki
de la AMM – Principios éticos para las investigaciones médicas en seres humanos
[Internet]. Disponible en: https://www.wma.net/es/policies-post/declaracion-de-helsinki-de-la-amm-principios-eticos-para-las-investigaciones-medicas-en-seres-humanos/
16.
Asociación Médica Mundial. Declaración de la AMM sobre
las Consideraciones Éticas de las Bases de Datos de Salud y los Biobancos
[Internet]. Disponible en https://www.wma.net/es/policies-post/declaracion-de-la-amm-sobre-las-consideraciones-eticas-de-las-bases-de-datos-de-salud-y-los-biobancos/
17.
Cabrera Rodríguez LE, Díaz Rigau L, Fernández Núñez T, Díaz Oliva
S, Carrasco Miraya A, García Fumero Y, et al.
Susceptibilidad antimicrobiana de aislados bacterianos en pacientes
hospitalizados y comunitarios. Rev Cubana
Med Trop [Internet].
2018;70(2):1–10. Disponible en: http://scielo.sld.cu/scielo.php?script=sci_arttext&pid=S0375-07602018000200003
18.
Zurita Altamirano
I, Morales Carrasco A, Agreda Orellana IS, Ochoa Crespo D, Gallegos Paredes M,
Rodríguez Vela V, et al. Infección por bacterias multirresistentes en pacientes
con trauma cráneo encefálico del servicio de terapia intensiva del hospital
Luis Vernaza, Ecuador. Arch Venez
Farmacol y Ter [Internet]. 2020;39(6). Disponible en: http://caelum.ucv.ve/ojs/index.php/rev_aavft/article/view/21075 DOI: 10.5281/zenodo.4404758
19. Alebel M, Mekonnen F, Mulu
W. Extended-spectrum β-lactamase and
carbapenemase producing gram-negative bacilli infections among patients in
intensive care units of Felegehiwot referral
hospital: A prospective cross-sectional study. Infect Drug Resist [Internet]. 2021;14:391-405. Disponible en: https://www.dovepress.com/extended-spectrum-beta-lactamase-and-carbapenemase-producing-gram-nega-peer-reviewed-fulltext-article-IDR DOI: 10.2147/IDR.S292246 PMID 33564247 PMCID PMC7867495
20.
Uc-Cachón AH, Gracida-Osorno C, Luna-Chi IG, Jiménez-Guillermo JG,
Molina-Salinas GM. High Prevalence of Antimicrobial Resistance Among
Gram-Negative Isolated Bacilli in Intensive Care Units at a Tertiary-Care
Hospital in Yucatán Mexico. Medicina (B Aires) [Internet]. 2019;55(9):588.
Disponible en: https://www.mdpi.com/1648-9144/55/9/588 DOI: 10.3390/medicina55090588 PMID 31540314 PMCID PMC6780114
21.
García
Castellanos T. Microorganismos aislados de pacientes hospitalizados en unidad
de cuidados intensivos. Identificación y resistencia antimicrobiana. Rev Cuba Med Intensiva y Emergencias [Internet]. 2014;13(2):2014.
Disponible en: http://www.revmie.sld.cu/index.php/mie/article/view/19/60
22.
Pérez Estrada FA.
Infección nosocomial en unidades de cuidados intensivos. Rev Cuba Med Intensiva y Emergencias [Internet]. 2014;13(2).
Disponible en: http://www.revmie.sld.cu/index.php/mie/article/view/15/52
23.
Caskurlu H, Davarci I, Kocoglu
ME, Cag Y. Examination of Blood and Tracheal Aspirate Culture Results in
Intensive Care Patients: 5-Year Analysis. Medeni Med
J [Internet]. 2020;35(2):128-35. Disponible en: https://dx.doi.org/10.5222/MMJ.2020.89138 DOI: 10.5222/MMJ.2020.89138 PMID 32733762 PMCID PMC7384512
24.
Caskurlu H, Davarci I, Kocoglu
ME, Cag Y. Examination of Blood and Tracheal Aspirate Culture Results in
Intensive Care Patients: 5-Year Analysis. Medeni Med
J [Internet]. 2020;35(2):128-35. Disponible en: https://dx.doi.org/10.5222/MMJ.2020.89138 DOI: 10.5222/MMJ.2020.89138 PMID 32733762 PMCID PMC7384512
25.
Ibrahim ME. High antimicrobial resistant rates among
Gram-negative pathogens in intensive care units. Saudi Med
J [Internet]. 2018;39(10):1035-1043. Disponible en: http://smj.org.sa/content/39/10/1035.abstract DOI: 10.15537/smj.2018.10.22944 PMID 30284588 PMCID PMC6201019
26. Pendleton JN,
Gorman SP, Gilmore BF. Clinical relevance of the ESKAPE pathogens. Expert Rev
Anti Infect Ther [Internet]. 2013;11(3):297-308. Disponible en: https://doi.org/10.1586/eri.13.12 DOI: 10.1586/eri.13.12 PMID 23458769
27.
Moolchandani K, Sastry AS, Deepashree R, Sistla S, Harish BN, Mandal J. Antimicrobial Resistance
Surveillance among Intensive Care Units of a Tertiary Care Hospital in Southern
India. J Clin Diagnostic Res [Internet]. 2017;11(2).
Disponible en: https://jcdr.net/articles/PDF/9247/23717_CE[Ra1]_F(DK)_PF1(P_RK)_PFA(P)_PF2(AG_OM).pdf DOI: 10.7860/JCDR/2017/23717.9247 PMID 28384858 PMCID PMC5376822
28.
Basak S, Singh P, Rajurkar M. Multidrug Resistant
and Extensively Drug Resistant Bacteria: A Study. J Pathog
[Internet]. 2016;2016:4065603. Disponible en: https://doi.org/10.1155/2016/4065603 DOI: 10.1155/2016/4065603 PMID 26942013 PMCID PMC4749793
29.
Fernández Merjildo D, García Apac C, Zegarra Piérola J, Granados Bullon
L. Susceptibilidad antimicrobiana en aislamientos de secreción endotraqueal en
la unidad de cuidados intensivos de un hospital nacional de Lima, 2016. Rev Medica Hered [Internet].
2017;28(4):236-41. Disponible en: https://revistas.upch.edu.pe/index.php/RMH/article/view/3223 DOI: 10.20453/rmh.v28i4.3223
30. Aly M, Balkhy HH. The prevalence of antimicrobial resistance in clinical isolates
from Gulf Corporation Council countries. Antimicrob Resist
Infect Control [Internet]. 2012;1(1):26. Disponible
en: https://doi.org/10.1186/2047-2994-1-26 DOI: 10.1186/2047-2994-1-26 PMID 22958584 PMCID PMC3436690
Contribución de los Autores
CREB y OTJG:
metodología, validación, análisis formal, investigación, recursos, curación de
datos, conservación de los datos, análisis formal, curación de datos,
redacción-revisión y edición, visualización
©2023. Los Autores. Kasmera.
Publicación del Departamento de Enfermedades Infecciosas y Tropicales de la
Facultad de Medicina. Universidad del Zulia. Maracaibo-Venezuela. Este
es un artículo de acceso abierto distribuido bajo los términos de la licencia
Creative Commons atribución no comercial (https://creativecommons.org/licenses/by-nc-sa/4.0/) que permite el uso no comercial, distribución y
reproducción sin restricciones en cualquier medio, siempre y cuando la obra
original sea debidamente citada.